<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE article PUBLIC "-//OASIS//DTD DocBook XML V4.1.2//EN" "http://www.oasis-open.org/docbook/xml/4.1.2/docbookx.dtd">
<article lang="">
  <sect1 id="page-container">
    <para><note><remark>Created by pdf2htmlEX (https://github.com/coolwanglu/pdf2htmlex)</remark></note><note><remark>HTML: &lt;meta http-equiv="X-UA-Compatible" content="IE=edge,chrome=1"&gt;</remark></note>/*
 Copyright 2012 Mozilla Foundation 
 Copyright 2013 Lu Wang &lt;coolwanglu@gmail.com&gt;
 Apache License Version 2.0 
*/
(function(){function b(a,b,e,f){var c=(a.className||"").split(/\s+/g);""===c[0]&amp;&amp;c.shift();var d=c.indexOf(b);0&gt;d&amp;&amp;e&amp;&amp;c.push(b);0&lt;=d&amp;&amp;f&amp;&amp;c.splice(d,1);a.className=c.join(" ");return 0&lt;=d}if(!("classList"in document.createElement("div"))){var e={add:function(a){b(this.element,a,!0,!1)},contains:function(a){return b(this.element,a,!1,!1)},remove:function(a){b(this.element,a,!1,!0)},toggle:function(a){b(this.element,a,!0,!0)}};Object.defineProperty(HTMLElement.prototype,"classList",{get:function(){if(this._classList)return this._classList;
var a=Object.create(e,{element:{value:this,writable:!1,enumerable:!0}});Object.defineProperty(this,"_classList",{value:a,writable:!1,enumerable:!1});return a},enumerable:!0})}})();(function(){/*
 pdf2htmlEX.js: Core UI functions for pdf2htmlEX 
 Copyright 2012,2013 Lu Wang &lt;coolwanglu@gmail.com&gt; and other contributors 
 https://github.com/coolwanglu/pdf2htmlEX/blob/master/share/LICENSE 
*/
var q=window.pdf2htmlEX=window.pdf2htmlEX||{},r="pc",s="pi",t={container_id:"page-container",sidebar_id:"sidebar",outline_id:"outline",loading_indicator_cls:"loading-indicator",preload_pages:3,render_timeout:100,scale_step:0.9,key_handler:!0,hashchange_handler:!0,__dummy__:"no comma"};function v(a,b){return[a[0]*b[0]+a[2]*b[1]+a[4],a[1]*b[0]+a[3]*b[1]+a[5]]}function w(a){for(var b=0,c=a.length;b&lt;c;++b)a[b].addEventListener("dragstart",function(){return!1},!1)}
function x(a){for(var b={},c=0,d=arguments.length;c&lt;d;++c){var e=arguments[c],g;for(g in e)e.hasOwnProperty(g)&amp;&amp;(b[g]=e[g])}return b}
function y(a){if(a){this.g=this.loaded=!1;this.page=a;this.r=parseInt(a.getAttribute("data-page-no"),16);this.m=a.clientHeight;this.t=a.clientWidth;var b=a.getElementsByClassName(r)[0];b&amp;&amp;(this.h=b,this.s=this.f=this.m/b.clientHeight,this.u=JSON.parse(a.getElementsByClassName(s)[0].getAttribute("data-data")),a=this.k=this.u.ctm,b=a[0]*a[3]-a[1]*a[2],this.o=[a[3]/b,-a[1]/b,-a[2]/b,a[0]/b,(a[2]*a[5]-a[3]*a[4])/b,(a[1]*a[4]-a[0]*a[5])/b],this.loaded=!0)}}
y.prototype={show:function(){this.loaded&amp;&amp;!this.g&amp;&amp;(this.h.classList.add("opened"),this.g=!0)},d:function(a){this.f=0===a?this.s:a;this.loaded&amp;&amp;(a=this.h.style,a.msTransform=a.webkitTransform=a.transform="scale("+this.f.toFixed(3)+")");a=this.page.style;a.height=this.m*this.f+"px";a.width=this.t*this.f+"px"},height:function(){return this.page.clientHeight},width:function(){return this.page.clientWidth}};
function z(a){a=a.page;var b=a.parentNode;return[b.scrollLeft-a.offsetLeft-a.clientLeft,b.scrollTop-a.offsetTop-a.clientTop]}function A(a){a.loaded&amp;&amp;a.g&amp;&amp;(a.h.classList.remove("opened"),a.g=!1)}function B(a){this.b=x(t,0&lt;arguments.length?a:{});this.i=[];C();var b=this;document.addEventListener("DOMContentLoaded",function(){E(b)},!1)}
B.prototype={scale:1,e:0,l:0,d:function(a,b,c){var d=this.scale;this.scale=a=0===a?1:b?d*a:a;c||(c=[0,0]);b=this.a;c[0]+=b.scrollLeft;c[1]+=b.scrollTop;for(var e=this.c,g=e.length,h=this.l;h&lt;g;++h){var f=e[h].page;if(f.offsetTop+f.clientTop&gt;=c[1])break}f=h-1;0&gt;f&amp;&amp;(f=0);var f=e[f].page,k=f.clientWidth,h=f.clientHeight,l=f.offsetLeft+f.clientLeft,m=c[0]-l;0&gt;m?m=0:m&gt;k&amp;&amp;(m=k);k=f.offsetTop+f.clientTop;c=c[1]-k;0&gt;c?c=0:c&gt;h&amp;&amp;(c=h);for(h=0;h&lt;g;++h)e[h].d(a);b.scrollLeft+=m/d*a+f.offsetLeft+f.clientLeft-
m-l;b.scrollTop+=c/d*a+f.offsetTop+f.clientTop-c-k;F(this,!0)},p:function(a){var b=a.target,c=b.getAttribute("data-dest-detail");if(c){var d=G;a:{for(;b;){if(b.nodeType===Node.ELEMENT_NODE&amp;&amp;b.classList.contains("pf")){var b=parseInt(b.getAttribute("data-page-no"),16),e=this.n,b=b in e?this.c[e[b]]:null;break a}b=b.parentNode}b=null}d(this,c,b);a.preventDefault()}}};
function H(a,b,c){var d=a.c;0&gt;b||b&gt;=d.length||(b=z(d[b]),void 0===c&amp;&amp;(c=[0,0]),a=a.a,a.scrollLeft+=c[0]-b[0],a.scrollTop+=c[1]-b[1])}
function G(a,b,c){try{var d=JSON.parse(b)}catch(e){return}if(d instanceof Array){b=d[0];var g=a.n;if(b in g){var h=g[b];b=a.c[h];for(var g=2,f=d.length;g&lt;f;++g){var k=d[g];if(null!==k&amp;&amp;"number"!==typeof k)return}for(;6&gt;d.length;)d.push(null);g=c||a.c[a.e];c=z(g);c=v(g.o,[c[0],g.height()-c[1]]);var g=a.scale,l=[0,0],m=!0,f=!1,k=a.scale;switch(d[1]){case "XYZ":l=[null===d[2]?c[0]:d[2]*k,null===d[3]?c[1]:d[3]*k];g=d[4];if(null===g||0===g)g=a.scale;f=!0;break;case "Fit":case "FitB":l=[0,0];f=!0;break;
case "FitH":case "FitBH":l=[0,null===d[2]?c[1]:d[2]*k];f=!0;break;case "FitV":case "FitBV":l=[null===d[2]?c[0]:d[2]*k,0];f=!0;break;case "FitR":l=[d[2]*k,d[5]*k],m=!1,f=!0}f&amp;&amp;(a.d(g,!1),d=function(b){l=v(b.k,l);m&amp;&amp;(l[1]=b.height()-l[1]);H(a,h,l)},b.loaded?d(b):(I(a,h,void 0,d),H(a,h)))}}}
function J(a){window.addEventListener("DOMMouseScroll",function(b){if(b.ctrlKey){b.preventDefault();var c=a.a,d=c.getBoundingClientRect();a.d(Math.pow(a.b.scale_step,b.detail),!0,[b.clientX-d.left-c.clientLeft,b.clientY-d.top-c.clientTop])}},!1);window.addEventListener("keydown",function(b){var c=!1,d=b.ctrlKey||b.metaKey,e=b.altKey;switch(b.keyCode){case 61:case 107:case 187:d&amp;&amp;(a.d(1/a.b.scale_step,!0),c=!0);break;case 173:case 109:case 189:d&amp;&amp;(a.d(a.b.scale_step,!0),c=!0);break;case 48:d&amp;&amp;(a.d(0,
!1),c=!0);break;case 33:e?H(a,a.e-1):a.a.scrollTop-=a.a.clientHeight;c=!0;break;case 34:e?H(a,a.e+1):a.a.scrollTop+=a.a.clientHeight;c=!0;break;case 35:a.a.scrollTop=a.a.scrollHeight;c=!0;break;case 36:a.a.scrollTop=0,c=!0}c&amp;&amp;b.preventDefault()},!1)}function F(a,b){if(void 0!==a.j){if(!b)return;clearTimeout(a.j)}a.j=setTimeout(function(){delete a.j;K(a)},a.b.render_timeout)}
function K(a){for(var b=a.a,c=b.scrollTop,d=b.clientHeight,b=c-d,c=c+d+d,d=a.c,e=0,g=d.length;e&lt;g;++e){var h=d[e],f=h.page,k=f.offsetTop+f.clientTop,f=k+f.clientHeight;k&lt;=c&amp;&amp;f&gt;=b?h.loaded?h.show():I(a,e):A(h)}}function C(){var a="@media screen{."+r+"{display:none;}}",b=document.createElement("style");b.styleSheet?b.styleSheet.cssText=a:b.appendChild(document.createTextNode(a));document.head.appendChild(b)}
function I(a,b,c,d){var e=a.c;if(!(b&gt;=e.length||(e=e[b],e.loaded||a.i[b]))){var e=e.page,g=e.getAttribute("data-page-url");if(g){a.i[b]=!0;var h=a.q.cloneNode();h.classList.add("active");e.appendChild(h);var f=a,k=new XMLHttpRequest;k.open("GET",g,!0);k.onreadystatechange=function(){if(4==k.readyState){if(200===k.status){var a=document.createElement("div");a.innerHTML=k.responseText;for(var c=null,a=a.childNodes,g=0,e=a.length;g&lt;e;++g){var h=a[g];if(h.nodeType===Node.ELEMENT_NODE&amp;&amp;h.classList.contains("pf")){c=
h;break}}a=f.c[b];f.a.replaceChild(c,a.page);a=new y(c);f.c[b]=a;A(a);a.d(f.scale);w(c.getElementsByClassName("bi"));F(f,!1);d&amp;&amp;d(a)}delete f.i[b]}};k.send(null)}void 0===c&amp;&amp;(c=a.b.preload_pages);0&lt;--c&amp;&amp;(f=a,setTimeout(function(){I(f,b+1,c)},0))}}function L(a){for(var b=[],c={},d=a.a.childNodes,e=0,g=d.length;e&lt;g;++e){var h=d[e];h.nodeType===Node.ELEMENT_NODE&amp;&amp;h.classList.contains("pf")&amp;&amp;(h=new y(h),b.push(h),c[h.r]=b.length-1)}a.c=b;a.n=c}
function E(a){a.sidebar=document.getElementById(a.b.sidebar_id);a.outline=document.getElementById(a.b.outline_id);a.a=document.getElementById(a.b.container_id);a.q=document.getElementsByClassName(a.b.loading_indicator_cls)[0];for(var b=!0,c=a.outline.childNodes,d=0,e=c.length;d&lt;e;++d)if("UL"===c[d].nodeName){b=!1;break}b||a.sidebar.classList.add("opened");L(a);0!=a.c.length&amp;&amp;(w(document.getElementsByClassName("bi")),a.b.key_handler&amp;&amp;J(a),a.b.hashchange_handler&amp;&amp;window.addEventListener("hashchange",
function(){G(a,document.location.hash.substring(1))},!1),a.a.addEventListener("scroll",function(){var b=a.c,c=b.length;if(!(2&gt;c)){for(var d=a.a,e=d.scrollTop,d=e+d.clientHeight,l=-1,m=c,n=m-l;1&lt;n;){var p=l+Math.floor(n/2),n=b[p].page;n.offsetTop+n.clientTop+n.clientHeight&gt;=e?m=p:l=p;n=m-l}a.l=m;for(var p=l=a.e,D=0;m&lt;c;++m){var n=b[m].page,u=n.offsetTop+n.clientTop,n=n.clientHeight;if(u&gt;d)break;n=(Math.min(d,u+n)-Math.max(e,u))/n;if(m===l&amp;&amp;1E-6&gt;=Math.abs(n-1)){p=l;break}n&gt;D&amp;&amp;(D=n,p=m)}a.e=p}F(a,!0)},
!1),[a.a,a.outline].forEach(function(b){b.addEventListener("click",a.p.bind(a),!1)}),K(a))}q.Viewer=B;})();try{
pdf2htmlEX.defaultViewer = new pdf2htmlEX.Viewer({});
}catch(e){}</para>
    <sect2 id="pf1">
      <para>
        <inlinegraphic fileref="embedded:Image1" width="5.5inch" depth="7.4799inch"/>
      </para>
      <para>261</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 261-278. Abril-Junio.</para>
      <para>DOI: https://doi.org/10.47280/RevFacAgron(LUZ).v38.n2.03 ISSN 2477-9407</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Recibido el 23-03-2020 . Aceptado el 04-07-2020.</para>
      <para>*Correspondig autor. Email: acebrahimzadeh@gmail.com, ebrahimzadeh@maragheh.ac.ir </para>
      <para>Micropropagation of Pelargonium odoratissimum (L.) </para>
      <para>L’Her. through petioles and leaves</para>
      <para>Micropropagación de Pelargonium odoratissimum (L.) </para>
      <para>L’Her., a través de explantes de hojas y pecíolos</para>
      <para>Micropropagação de Pelargonium odoratissimum (L.) </para>
      <para>L’Her. através de pecíolos e folhas</para>
      <para>Asghar Ebrahimzadeh</para>
      <para>1,*</para>
      <para>, Maliheh Fathollahzadeh</para>
      <para>2</para>
      <para>, </para>
      <para>Mohammad Bagher Hassanpouraghdam</para>
      <para>3, 4</para>
      <para>and Mohammad </para>
      <para>Ali Aazami Mavaloo</para>
      <para>5</para>
      <para>1</para>
      <para>Assitant Professor, Department of Horticultural Sciences, Faculty of Agriculture, </para>
      <para>University of Maragheh, Iran. Email:acebrahimzadeh@gmail.com, . </para>
      <para>2</para>
      <para>Former Master </para>
      <para>student, Department of Horticultural Sciences, Faculty of Agriculture, University of </para>
      <para>Maragheh, Iran. Email: f_malihe@yahoo.com. </para>
      <para>3</para>
      <para>Associate Professor, Department of </para>
      <para>Horticultural Sciences, Faculty of Agriculture, University of Maragheh, Iran. Email: </para>
      <para>hassanpouraghdam@gmail.com, . </para>
      <para>4</para>
      <para>Islamic Parliament Research Center, Tehran, </para>
      <para>Iran. </para>
      <para>5</para>
      <para>Assitant Professor, Department of Horticultural Sciences, Faculty of Agriculture, </para>
      <para>University of Maragheh, Iran. Email: aazami58@gmail.com, .</para>
      <para>Abstract</para>
      <para>Pelargonium odoratissimum (L.) L’Her is a hard rooting plant and the </para>
      <para>common methods of propagation via stem cuttings are not successful with this </para>
      <para>species. therefore, tissue culture methods have been experienced for the mass-</para>
      <para>propagation of this high-valued species. Intact leaves, leaf segments and petiole </para>
      <para>sections derived from nodal explants in vitro were employed for the optimization </para>
      <para>of P. odoratissimum micropropagation. The treatment combinations used were </para>
      <para>MS and </para>
      <para>1</para>
      <para>/</para>
      <para>2</para>
      <para>MS media supplemented with 6-benzylaminopurine, BAP (1, 1.5, 2 </para>
      <para>and 4.5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>) and 1-naphthaleneacetic acid, NAA (0.1, 1 and 1.5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>). With </para>
      <para>leaf segments, the lowest browning incidence, the greatest callogenesis and the </para>
      <para>highest number of shoots were obtained with the media containing 1.5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP and 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA. Two mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 0.1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA kept the same results </para>
      <para>for petiole explants. Intact leaves showed the best results for the three mentioned </para>
      <para/>
    </sect2>
    <sect2 id="pf2">
      <para>262</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 261-278. Abril-Junio.</para>
      <para>Ebrahimzadeh et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>treatments with 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA. 0.2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA caused the highest </para>
      <para>rooting percentage and the greatest mean data for the number and length of the </para>
      <para>roots. Rooted plantlets were transferred to the pots containing 1:1 peat-moss and </para>
      <para>perlite. Acclimatization of the plantlets was followed by 90 % of survival rate in </para>
      <para>the greenhouse. The protocol employed would be a potent one to present for the </para>
      <para>extension section.</para>
      <para>Keyword: nodal explants, MS medium, shoot organogenesis, BAP, NAA, leaf </para>
      <para>segments.</para>
      <para>Resumen</para>
      <para>Pelargonium odoratissimum (L.) L’Her es una planta de complejo enraizamiento </para>
      <para>y los métodos comunes de propagación mediante esquejes de tallos no presentan </para>
      <para>un resultado positivo con esta especie. Acorde a lo anterior, han realizado ensayos </para>
      <para>empleando métodos de cultivo de tejidos para la propagación a gran escala de </para>
      <para>esta especie de alto valor. Se emplearon: hojas completas, segmentos de hojas y </para>
      <para>secciones de pecíolo; derivadas de explantes nodales producidos in vitro para la </para>
      <para>optimización de la micropropagación de P. odoratissimum. Las combinaciones de </para>
      <para>tratamiento utilizadas fueron: MS y </para>
      <para>1</para>
      <para>/</para>
      <para>2</para>
      <para>MS enriquecidos con 6-bencilaminopurina, </para>
      <para>BAP (1, 1.5, 2 y 4.5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>) y ácido naftalenacético, NAA (0.1, 1 y 1.5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>). Al </para>
      <para>utilizar segmentos foliares, se observó menor incidencia de pardeamiento y mayor </para>
      <para>callogénesis. El mayor número de brotes se obtuvo con el medio de cultivo que </para>
      <para>contenía 1,5 mg.L</para>
      <para>-1 </para>
      <para>BAP y 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA. Los medios de cultivo de 2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + </para>
      <para>0.1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA, presentaron los mismos resultados para los explantes de peciolo. </para>
      <para>Las hojas completas mostraron los mejores resultados el emplear el medio de 1 </para>
      <para>mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA. El tratamiento de 0.2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA causó el mayor </para>
      <para>porcentaje de enraizamiento y la mayor media de datos para el número y longitud </para>
      <para>de raíces. Las plántulas enraizadas se transrieron a materas utilizando como </para>
      <para>sustrato una mezcla de turba-musgo y perlita, con una relación de mezcla 1:1. El </para>
      <para>acondicionamiento de las plántulas presentaron una tasa de superviviencia 90 % </para>
      <para>en el invernadero. El protocolo empleado presento altas tasas de efectividad como </para>
      <para>medio de propagación para su extensión.</para>
      <para>Palabras clave: explantes nodales, MS, organogénesis de brotes, BAP, NAA, </para>
      <para>segmentos foliares.</para>
      <para>Resumo</para>
      <para>Pelargonium odoratissimum (L.) L’Her é uma planta de enraizamento difícil e </para>
      <para>os métodos comuns de propagação por meio de estacas não têm sucesso com esta </para>
      <para>espécie. Portanto, métodos de cultura de tecidos têm sido experimentados para </para>
      <para>a propagação em massa desta espécie de alto valor. Folhas intactas, segmentos </para>
      <para>foliares e seções de pecíolo derivados de explantes nodais in vitro foram </para>
      <para>empregados para a otimização da micropropagação de P. odoratissimum. As </para>
      <para>combinações de tratamento utilizadas foram meio MS e </para>
      <para>1</para>
      <para>/</para>
      <para>2</para>
      <para>MS suplementado com </para>
      <para>6-benzilaminopurina, BAP (1, 1,5, 2 e 4,5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>) e ácido 1-naftalenoacético, NAA </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pf3">
      <para>263</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 261-278. Abril-Junio.</para>
      <para>Ebrahimzadeh et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>(0,1, 1 e 1,5 mg.L</para>
      <para>- 1</para>
      <para>). Nos segmentos foliares, a menor incidência de escurecimento, </para>
      <para>a maior calogênese e o maior número de brotações foram obtidos com os meios </para>
      <para>contendo 1,5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>de BAP e 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>de ANA. Dois mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>de BAP + 0,1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>de NAA mantiveram os mesmos resultados para explantes de pecíolo. As folhas </para>
      <para>intactas apresentaram os melhores resultados para os três tratamentos citados </para>
      <para>com 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>ANA. 0,2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA causou a maior porcentagem </para>
      <para>de enraizamento e os maiores dados médios para o número e comprimento das </para>
      <para>raízes. As plântulas enraizadas foram transferidas para vasos contendo turfa-</para>
      <para>musgo 1: 1 e perlita. A aclimatação das mudas foi acompanhada por 90% de </para>
      <para>sobrevivência em casa de vegetação. O protocolo empregado seria potente para </para>
      <para>apresentar para a seção de extensão.</para>
      <para>Palavras-chave: explantes nodais, meio MS, organogênese caulinar, BAP, NAA, </para>
      <para>segmentos foliares.</para>
      <para>Introduction</para>
      <para>Pelargonium odoratissimum (L.) </para>
      <para>L’Her. belongs to the Geraniaceae </para>
      <para>family (Hassanein and Dorion, 2005). </para>
      <para>Essential oil of this species is widely </para>
      <para>used in fragrance, hygienic and </para>
      <para>cosmetic industries. Furthermore, </para>
      <para>the oil holds antimicrobial, antifungal </para>
      <para>and insecticidal activities (Gupta </para>
      <para>et al., 2002). P. odoratissimum is </para>
      <para>considered a hard-to-root species that </para>
      <para>is not successfully multiplied when </para>
      <para>methods of propagation via stem </para>
      <para>cuttings, commonly used in other </para>
      <para>Pelargonium species, are applied </para>
      <para>(Bhuse et al, 2003). Therefore, tissue </para>
      <para>culture methods have been completed </para>
      <para>for the mass-propagation of this </para>
      <para>high-valued species (Gupta et al., </para>
      <para>2002). Diverse plant organs have </para>
      <para>been utilized as micropropagation </para>
      <para>propagules (Gupta et al., 2002). Shoot </para>
      <para>organogenesis has been successful </para>
      <para>with different Pelargonium species via </para>
      <para>direct (Dunbar and Stephens, 1989) </para>
      <para>or indirect (callogenesis) procedures </para>
      <para>(Boase et al., 1998; </para>
      <para>Agarwal and </para>
      <para>Introducción</para>
      <para>Pelargonium odoratissimum </para>
      <para>(L.) L’Her. pertenece a la familia </para>
      <para>Geraniaceae (Hassanein y Dorion, </para>
      <para>2005). El aceite esencial de esta </para>
      <para>especie es ampliamente utilizado en </para>
      <para>las industrias de fragancias, higiene </para>
      <para>y cosméticos. Adicionalmente el </para>
      <para>aceite, se le atribuye propiedades </para>
      <para>antimicrobianas, antifúngicas e </para>
      <para>insecticida (Gupta et al., 2002). </para>
      <para>Pelargonium odoratissimum se </para>
      <para>considera una especie de complejo </para>
      <para>enraizamiento y bajo éxito en los </para>
      <para>métodos de propagación a través </para>
      <para>de esquejes de tallo, empleados </para>
      <para>comúnmente en otras especies de </para>
      <para>Pelargonium (Bhuse et al, 2003). </para>
      <para>Esta problemática, ha generado el </para>
      <para>desarrollo de métodos de cultivos de </para>
      <para>tejidos para la propagación masiva de </para>
      <para>esta especie de alto valor industrial </para>
      <para>(Gupta et al., 2002). Diversos órganos </para>
      <para>vegetales se han utilizado como </para>
      <para>propágulos en micropropagación </para>
      <para>(Gupta et al., 2002). La organogénesis </para>
      <para>del brote ha tenido éxito con </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pf4">
      <para>264</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 261-278. Abril-Junio.</para>
      <para>Ebrahimzadeh et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>Ranu, 2000). Wojtania et al. </para>
      <para>(2004) reported the highest shoot </para>
      <para>organogenesis from petiole segments </para>
      <para>in ‘Bonete’ (a hybrid of Pelargonium </para>
      <para>× hederaefolium) using a medium </para>
      <para>containing 2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>Thidiazuron </para>
      <para>(TDZ) and 0.1 - 0.2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>indole-</para>
      <para>3-butyric acid (IBA). Furthermore, </para>
      <para>shoot proliferation from leaf and </para>
      <para>petioles of P. graveolens was </para>
      <para>achieved in the Linsmaier and Skoog </para>
      <para>(LS) medium enriched with 1 mg.L</para>
      <para>-</para>
      <para>1 </para>
      <para>of 1-naphthaleneacetic acid (NAA) </para>
      <para>and 5 mg.L</para>
      <para>-1 </para>
      <para>of 6-benzylaminopurine </para>
      <para>(BAP) (Ghanem et al., 2008). In </para>
      <para>another study, Hassanein and Dorion </para>
      <para>(2005) reported that 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>Zeatin + </para>
      <para>1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 0.5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA were </para>
      <para>the growth regulator combination </para>
      <para>for the highest shoot organogenesis </para>
      <para>rate in P. graveolens cv. “Bois joly”. </para>
      <para>Regarding root organogenesis, the </para>
      <para>highest rooting percentage was </para>
      <para>induced on half-strength Murashige </para>
      <para>y Skoog (MS) medium supplemented </para>
      <para>with 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>indolacetic acid (IAA) </para>
      <para>(Hassanein and Dorion, 2005). Rao </para>
      <para>(1994) documented that 0.1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA was the best treatment for </para>
      <para>the optimum rooting treatments in </para>
      <para>Pelargonium. In another study, 90 </para>
      <para>% of the shoots produced roots after </para>
      <para>15 days on a medium containing 0.1 </para>
      <para>mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>IBA (Tembe and Deodhar, </para>
      <para>2010). Moreover, Desilets et al. (1993) </para>
      <para>reported that the roots emerged </para>
      <para>easily in a hormone free </para>
      <para>1</para>
      <para>/</para>
      <para>2</para>
      <para>strength </para>
      <para>MS medium. The main purpose of </para>
      <para>the present study was to formulate </para>
      <para>an efcient in vitro propagation </para>
      <para>protocol for P. odoratissimum from </para>
      <para>leaf and petiole sections and intact </para>
      <para>leaf.</para>
      <para>diferentes especies de Pelargonium </para>
      <para>a través de procedimientos directos </para>
      <para>(Dunbar y Stephens, 1989) o </para>
      <para>indirectos (callogénesis) (Boase et </para>
      <para>al., 1998; Agarwal y Ranu, 2000). </para>
      <para>Wojtania et al. (2004), reportaron </para>
      <para>la mayor organogénesis de brotes a </para>
      <para>partir de segmentos de pecíolos en </para>
      <para>‘Bonete’ (un híbrido de Pelargonium </para>
      <para>X hederaefolium) empleando un medio </para>
      <para>de cultivo de: 2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>Tidiazuron </para>
      <para>(TDZ) y 0,1 - 0,2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>de acido </para>
      <para>indobutírico (IBA). Otros estudios, </para>
      <para>obtuvieron proliferación de brotes </para>
      <para>de hojas y pecíolos de P. graveolens </para>
      <para>empleado medio enriquecido de </para>
      <para>Linsmaier y Skoog (LS) con 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>acido 1-naftaleacético (NAA) y 5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>6-benzilaminopurina (BAP) (Ghanem </para>
      <para>et al., 2008). Hassanein y Dorion </para>
      <para>(2005) obtuvieron que 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>Zeatin </para>
      <para>+ 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 0,5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA, </para>
      <para>fue la combinación de reguladores </para>
      <para>de crecimiento para obtener la tasa </para>
      <para>más alta de organogénesis de brote </para>
      <para>en P. graveolens cv. “Bois joly”. En </para>
      <para>cuanto a la organogénesis de la raíz, </para>
      <para>el porcentaje de enraizamiento más </para>
      <para>alto se indujo con el medio de cultivo </para>
      <para>Murashige y Skoog (MS) a la mitad </para>
      <para>de su concentración suplementado </para>
      <para>con 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>ácido indolacético (IAA) </para>
      <para>(Hassanein y Dorion, 2005). Rao </para>
      <para>(1994) documentó que 0,1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA fue el mejor tratamiento para </para>
      <para>los tratamientos de enraizamiento </para>
      <para>óptimos en pelargonio. En otro estudio, </para>
      <para>el 90 % de los brotes produjeron raíces </para>
      <para>después de 15 días en un medio con </para>
      <para>contenido de 0,1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>IBA (Tembe </para>
      <para>y Deodhar, 2010). Por otra parte, </para>
      <para>Desilets et al. (1993) concluyo que </para>
      <para>las raíces emergieron fácilmente en </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pf5">
      <para>265</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 261-278. Abril-Junio.</para>
      <para>Ebrahimzadeh et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>Materials and methods</para>
      <para>Plant material and supercial </para>
      <para>sterilization</para>
      <para>Intact leaves, petiole and leaf </para>
      <para>segments were chosen from in vitro </para>
      <para>derived shoots. In vitro mother plants </para>
      <para>were initiated from nodal-cuttings </para>
      <para>excised from plants grown in a </para>
      <para>greenhouse. Supercial sterilization </para>
      <para>of nodal cuttings was completed </para>
      <para>in a laminar-airow cabinet as </para>
      <para>followed: immersion in 70 % ethanol </para>
      <para>for one minute, followed by sodium </para>
      <para>hypochlorite 15 % containing 2 drops </para>
      <para>of Triton X-100 for 13 minutes. </para>
      <para>Thereafter, the explants were three-</para>
      <para>times rinsed in distilled water and </para>
      <para>then were treated with 70 % alcohol </para>
      <para>for 20 seconds. The nodal cuttings </para>
      <para>were cultured in Murashige and Skoog </para>
      <para>(MS) (Murashige and Skoog, 1962) </para>
      <para>medium, and after about one month, </para>
      <para>the new shoots were chosen for the </para>
      <para>current study explants.</para>
      <para>Media and shoot proliferation </para>
      <para>The basal medium was MS </para>
      <para>supplemented with 3 % sucrose, 0.7 % </para>
      <para>agar and 500 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>myo-inositol. Leaf </para>
      <para>and petiole segments were cut into 0.5 </para>
      <para>cm sections under a laminar airow </para>
      <para>cabinet. Intact leaf samples were leaves </para>
      <para>with about 1 cm in diameter. The </para>
      <para>explants were cultured in </para>
      <para>1</para>
      <para>/</para>
      <para>2</para>
      <para>strength </para>
      <para>MS medium containing BAP (1, 1.5, </para>
      <para>2 and 4.5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>) and NAA (0.1, 1 and </para>
      <para>1.5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>) as treatment combinations. </para>
      <para>To prevent tissue browning 50 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>ascorbic acid was added to the medium. </para>
      <para>Medium pH was adjusted at 5.6 - 5.7 </para>
      <para>before autoclaving at 121</para>
      <para>ºC</para>
      <para>for 20 </para>
      <para>minutes. Three explants were placed </para>
      <para>in each 9-cm petri-dish. The cultures </para>
      <para>un medio de cultivo de </para>
      <para>1</para>
      <para>/</para>
      <para>2</para>
      <para>MS libre </para>
      <para>de hormona. El objetivo principal </para>
      <para>del presente estudio fue formular </para>
      <para>un protocolo de propagación in vitro </para>
      <para>eciente para P. odoratissimum </para>
      <para>empleando secciones de hojas y </para>
      <para>pecíolos, y hojas completas. </para>
      <para>Material y métodos</para>
      <para>Material vegetal y esterilización </para>
      <para>supercial</para>
      <para>Las hojas completas, las secciones </para>
      <para>de pecíolo y de hojas fueron elegidos </para>
      <para>de brotes cultivados in vitro. Las </para>
      <para>plantas madre cultivadas in vitro </para>
      <para>provienen de cortes nodales de </para>
      <para>plantas cultivadas en invernadero. La </para>
      <para>esterilización supercial de esquejes </para>
      <para>nodales se realizó en una cabina </para>
      <para>laminar con ujo de aire empleando: </para>
      <para>inmersión en etanol al 70 % durante </para>
      <para>un minuto, seguida de hipoclorito </para>
      <para>sódico 15 % que contiene 2 gotas de </para>
      <para>Tritón X-100 durante 13 minutos. A </para>
      <para>partir de entonces, los explantes se </para>
      <para>limpiaron tres veces en agua destilada </para>
      <para>y posteriormente fueron tratados con </para>
      <para>70 % de alcohol durante 20 segundos. </para>
      <para>Los esquejes nodales se cultivaron en </para>
      <para>el medio de Murashige y Skoog (MS) </para>
      <para>(Murashige y Skoog, 1962), y después </para>
      <para>de aproximadamente un mes, los </para>
      <para>nuevos brotes fueron elegidos para los </para>
      <para>explantes de estudio actuales.</para>
      <para>Medio de cultivo y proliferación </para>
      <para>de brotes</para>
      <para>El medio inicial fue el MS </para>
      <para>suplementado con 3 % de sacarosa, </para>
      <para>0,7 % de agar y 500 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>mioinositol. </para>
      <para>Los segmentos de hojas y pecíolos </para>
      <para>se cortaron en secciones de 0,5 cm </para>
      <para>bajo una</para>
      <para>cabina de ujo laminar. </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pf6">
      <para>266</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 261-278. Abril-Junio.</para>
      <para>Ebrahimzadeh et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>were placed under dark conditions </para>
      <para>for two weeks, followed by 16:8 hour </para>
      <para>photoperiod regime at 23 ± 1</para>
      <para>º</para>
      <para>C and 20 ± </para>
      <para>1</para>
      <para>º</para>
      <para>C, respectively. </para>
      <para>Four weeks after the explants </para>
      <para>were initiated, crispy and creamy calli </para>
      <para>developed. Callus formation percentage </para>
      <para>was measured for each explant. </para>
      <para>Calli were sub-cultured on the above </para>
      <para>described medium means MS + all BAP </para>
      <para>and NAA combinations. Two weeks </para>
      <para>later, shoots noticed. About two more </para>
      <para>weeks later, the number and length of </para>
      <para>the shoots were recorded.</para>
      <para>Rooting </para>
      <para>The shoots (3 - 4 cm) were excised </para>
      <para>and placed on </para>
      <para>1</para>
      <para>/</para>
      <para>2</para>
      <para>strength MS medium </para>
      <para>containing 0.1 or 0.2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA and 2 </para>
      <para>mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>active charcoal. The number and </para>
      <para>length of the roots were recorded two </para>
      <para>weeks later.</para>
      <para>Acclimatization </para>
      <para>After removing the adhered agar </para>
      <para>from the roots using 50 </para>
      <para>º</para>
      <para>C water, </para>
      <para>the rooted shoots (3 - 4 cm) were </para>
      <para>transferred to the pots containing 1:1 </para>
      <para>peat - moss: perlite. Rooted cuttings </para>
      <para>were placed in growth chambers with </para>
      <para>16:8 photoperiod at 23 ± 1</para>
      <para>º</para>
      <para>C and 20 ± </para>
      <para>1</para>
      <para>º</para>
      <para>C, respectively</para>
      <para>.</para>
      <para>Statistical analysis</para>
      <para>This experiment was conducted </para>
      <para>as factorial experiments arranged </para>
      <para>in a complete block design with </para>
      <para>18 treatment combinations (3 </para>
      <para>explant types × 6 Plant Growth </para>
      <para>Regulator (PGR) combinations) with </para>
      <para>5 replications in each experimental </para>
      <para>unit. Each experiment was repeated at </para>
      <para>least twice and the reported data are </para>
      <para>the means of two experiments. Data </para>
      <para>analyses was performed using IBM </para>
      <para>SPSS software (version 21) (SPSS, </para>
      <para>Las muestras de hojas intactas </para>
      <para>correspondían aproximadamente </para>
      <para>a hojas de 1 cm de diámetro. Los </para>
      <para>explantes se cultivaron en un medio de </para>
      <para>1</para>
      <para>/</para>
      <para>2</para>
      <para>MS que contenía combinaciones de </para>
      <para>BAP (1; 1,5; 2 y 4,5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>) y NAA (0,1; </para>
      <para>1 y 1,5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>) como tratamientos. Para </para>
      <para>prevenir el pardeamiento de tejidos, </para>
      <para>se añadió 50 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>de ácido ascórbico </para>
      <para>al medio. El pH de medio se ajustó a </para>
      <para>5,6 - 5,7 antes de autoclavado a 121°C </para>
      <para>durante 20 minutos. Se colocaron tres </para>
      <para>explantes de 9 cm en cada placa de </para>
      <para>Petri bajo condiciones de oscuridad </para>
      <para>durante dos semanas, seguidas por un </para>
      <para>régimen de fotoperiodo de 16:8 horas a </para>
      <para>23 ± 1°C y 20 ± 1°C, respectivamente. </para>
      <para>Cuatro semanas después de </para>
      <para>que se iniciaran los explantes, se </para>
      <para>desarrollaron callos crujientes y </para>
      <para>cremosos. Se midió el porcentaje </para>
      <para>de formación del callo para cada </para>
      <para>explante. Los callos fueron sub-</para>
      <para>cultivados en cada medio de </para>
      <para>cultivo o tratamiento descrito </para>
      <para>anteriormente (MS + combinaciones </para>
      <para>de BAP y NAA). Dos semanas </para>
      <para>después, se evidenciaron brotes que </para>
      <para>posteriormente a las dos semanas </para>
      <para>más tarde, se registraron el número </para>
      <para>y la longitud de los brotes presentes.</para>
      <para>Enraizamiento </para>
      <para>Los brotes (3 - 4 cm) fueron </para>
      <para>extraídos y colocados en un medio de </para>
      <para>1</para>
      <para>/</para>
      <para>2</para>
      <para>MS que contiene 0,1 o 0,2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA y 2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>de carbón activado. </para>
      <para>El número y la longitud de las raíces </para>
      <para>se registraron dos semanas más </para>
      <para>tarde.</para>
      <para>Aclimatación </para>
      <para>Después de retirar el agar </para>
      <para>adherido de las raíces usando agua a </para>
      <para>50°C, los brotes enraizados (3 - 4 cm) </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pf7">
      <para>267</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 261-278. Abril-Junio.</para>
      <para>Ebrahimzadeh et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>2012). Mean comparison were carried </para>
      <para>out by LSD at 5 % probability level.</para>
      <para>Results and discussion </para>
      <para>Callogenesis</para>
      <para>Calli developed from the </para>
      <para>explants incubated in the dark </para>
      <para>during 4 weeks on </para>
      <para>1</para>
      <para>/</para>
      <para>2</para>
      <para>strength MS </para>
      <para>medium supplemented with BAP </para>
      <para>and NAA at different concentration </para>
      <para>combinations. ANOVA results </para>
      <para>showed that PGR combinations </para>
      <para>(BAP + NAA) as well explant type, </para>
      <para>and their interactions affected the </para>
      <para>callogenesis, signicantly (p&lt;0.01). </para>
      <para>The results showed that intact leaf </para>
      <para>explants with 1.5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 1 </para>
      <para>mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA, petiole explants with 2 </para>
      <para>mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 0.1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA, all three </para>
      <para>explant types with 1.5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 1 </para>
      <para>mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA treatment combinations </para>
      <para>as well as the intact leaf and leaf </para>
      <para>segments with 4.5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 1 </para>
      <para>mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA treatment had maximum </para>
      <para>callus percentage but there was not </para>
      <para>signicant difference among them </para>
      <para>(table 1). Therefore, the 1.5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA combination </para>
      <para>would be an appropriate treatment </para>
      <para>for callus proliferation in this </para>
      <para>species regardless the explant type. </para>
      <para>Callogenesis is dependent upon the </para>
      <para>internal and external concentrations </para>
      <para>of PGRs (Benazir et al., 2013). So, </para>
      <para>a suitable concentration of auxins </para>
      <para>and cytokinins is necessary to </para>
      <para>have reasonable callus formation </para>
      <para>as initial in vitro propagation </para>
      <para>stage. In Pelargonium rapaceum, </para>
      <para>Sukhumpinij et al. (2010) reported </para>
      <para>that callus production was optimum </para>
      <para>using leaf explants in a medium </para>
      <para>se sembraron en macetas con sustrato </para>
      <para>1:1 turba - musgo: perlita. Los esquejes </para>
      <para>enraizados se colocaron en cámaras de </para>
      <para>crecimiento con fotoperiodo 16:8 a 23 ± </para>
      <para>1°C y 20 ± 1°C, respectivamente. </para>
      <para>Análisis estadístico</para>
      <para>Este experimento se llevó a cabo </para>
      <para>como factorial de bloques al azar de </para>
      <para>18 tratamientos (3 tipos de explantes </para>
      <para>× 6 combinaciones de reguladores </para>
      <para>de crecimiento vegetal (PGR)) </para>
      <para>con 5 repeticiones en cada unidad </para>
      <para>experimental. Cada experimento se </para>
      <para>repitió dos veces y los datos obtenidos </para>
      <para>son la media de dos experimentos. Los </para>
      <para>análisis de datos se realizaron utilizando </para>
      <para>el software IBM SPSS (versión 21) </para>
      <para>(SPSS, 2012). La comparación media </para>
      <para>se llevó a cabo por LSD en un nivel de </para>
      <para>probabilidad del 5 %.</para>
      <para>Resultados y discusión </para>
      <para>Callogénesis</para>
      <para>Los callos se desarrollaron a </para>
      <para>partir de los explantes incubados </para>
      <para>en la oscuridad durante 4 semanas </para>
      <para>en medio de </para>
      <para>1</para>
      <para>/</para>
      <para>2</para>
      <para>MS suplementado </para>
      <para>con BAP y NAA en diferentes </para>
      <para>combinaciones de concentración. Los </para>
      <para>resultados de ANOVA mostraron </para>
      <para>que las combinaciones de PGR (BAP </para>
      <para>+ NAA) así como el tipo de explante, </para>
      <para>y sus interacciones afectaron a </para>
      <para>la callogénesis, signicativamente </para>
      <para>(p&lt;0.01). Los resultados mostraron </para>
      <para>que los explantes de hojas completas </para>
      <para>con 1,5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA, </para>
      <para>explantes de pecíolo con 2 mg. L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP </para>
      <para>+ 0,1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA, los tres tipos de </para>
      <para>explantes con 1.5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA combinaciones de tratamientos, </para>
      <para>así como los segmentos de hoja y </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pf8">
      <para>
        <inlinegraphic fileref="embedded:Image2" width="4.9236inch" depth="4.4445inch"/>
      </para>
      <para>268</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 261-278. Abril-Junio.</para>
      <para>Ebrahimzadeh et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>enriched with 0.1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 0.1 </para>
      <para>mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA. Furthermore, Gharib </para>
      <para>(2005) demonstrated that callus </para>
      <para>formation and organogenesis in </para>
      <para>Table 1. Mean comparison for the effects of explant type and BAP-NAA </para>
      <para>combinations on callogenesis and shoot organogenesis in </para>
      <para>Pelargonium odoratissimum.</para>
      <para>Cuadro 1. Comparación de los efectos de las combinaciones de tipo de </para>
      <para>explante y BAP-NAA en la callogénesis y organogénesis de </para>
      <para>broto en Pelargonium odoratissimum.</para>
      <para>Study factor Means</para>
      <para>Explant</para>
      <para>BAP </para>
      <para>mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA </para>
      <para>mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>Browning </para>
      <para>(%)</para>
      <para>Callogenesis </para>
      <para>(%)</para>
      <para>Mean shoot </para>
      <para>number</para>
      <para>Mean shoot </para>
      <para>length(cm)</para>
      <para>Intact leaf 1 1 32.3</para>
      <para>efg</para>
      <para>100</para>
      <para>a</para>
      <para>15</para>
      <para>ab</para>
      <para>2.5</para>
      <para>abc</para>
      <para>Intact leaf 1.5 1 16.3</para>
      <para>g</para>
      <para>100</para>
      <para>a</para>
      <para>10.6</para>
      <para>cd</para>
      <para>3</para>
      <para>ab</para>
      <para>Intact leaf 1.5 1.5 15.3</para>
      <para>g</para>
      <para>86.4</para>
      <para>abc</para>
      <para>12.5</para>
      <para>bcd</para>
      <para>3.194</para>
      <para>a</para>
      <para>Intact leaf 2 0.1 39.9</para>
      <para>def</para>
      <para>73.6</para>
      <para>bcd</para>
      <para>8.16</para>
      <para>de</para>
      <para>2.1</para>
      <para>bcd</para>
      <para>Intact leaf 2 1 22.9</para>
      <para>fg</para>
      <para>100</para>
      <para>a</para>
      <para>13.84</para>
      <para>bc</para>
      <para>3</para>
      <para>ab</para>
      <para>Intact leaf 4.5 1 28.6</para>
      <para>efg</para>
      <para>93.2</para>
      <para>ab</para>
      <para>8.9</para>
      <para>cde</para>
      <para>3.46</para>
      <para>a</para>
      <para>Leaf segments 1 1 71</para>
      <para>abc</para>
      <para>39.6</para>
      <para>fg</para>
      <para>2.1</para>
      <para>f</para>
      <para>0.9</para>
      <para>ef</para>
      <para>Leaf segments 1.5 1 12.3</para>
      <para>g</para>
      <para>100</para>
      <para>a</para>
      <para>19.92</para>
      <para>a</para>
      <para>3</para>
      <para>ab</para>
      <para>Leaf segments 1.5 1.5 73</para>
      <para>abc</para>
      <para>36</para>
      <para>fg</para>
      <para>2 </para>
      <para>f</para>
      <para>0.55</para>
      <para>ef</para>
      <para>Leaf segments 2 0.1 42.64</para>
      <para>def</para>
      <para>79</para>
      <para>abcd</para>
      <para>9.16</para>
      <para>cde</para>
      <para>2.5</para>
      <para>abc</para>
      <para>Leaf segments 2 1 46.5</para>
      <para>dc</para>
      <para>66.58</para>
      <para>cde</para>
      <para>5.29</para>
      <para>ef</para>
      <para>2</para>
      <para>cd</para>
      <para>Leaf segments 4.5 1 33.3</para>
      <para>efg</para>
      <para>100</para>
      <para>a</para>
      <para>11.7</para>
      <para>bcd</para>
      <para>2.42</para>
      <para>abc</para>
      <para>petiole 1 1 58.9</para>
      <para>bcd</para>
      <para>73b</para>
      <para>cd</para>
      <para>4.36</para>
      <para>ef</para>
      <para>1.2</para>
      <para>def</para>
      <para>petiole 1.5 1 40.6</para>
      <para>def</para>
      <para>93.2</para>
      <para>ab</para>
      <para>2.78</para>
      <para>f</para>
      <para>1.35</para>
      <para>de</para>
      <para>petiole 1.5 1.5 79.3</para>
      <para>ab</para>
      <para>45.6</para>
      <para>efg</para>
      <para>1.78 </para>
      <para>f</para>
      <para>0.456</para>
      <para>ef</para>
      <para>petiole 2 0.1 15.3</para>
      <para>g</para>
      <para>100</para>
      <para>a</para>
      <para>19.1</para>
      <para>a</para>
      <para>3.3</para>
      <para>a</para>
      <para>petiole 2 1 92.6</para>
      <para>a</para>
      <para>25.32</para>
      <para>g</para>
      <para>0.66</para>
      <para>f</para>
      <para>0.21</para>
      <para>f</para>
      <para>petiole 4.5 1 56.38</para>
      <para>cd</para>
      <para>59.6</para>
      <para>def</para>
      <para>2</para>
      <para>f</para>
      <para>1.12</para>
      <para>ef</para>
      <para>Different letters indicate signicant difference within each column based on LSD test at p&lt;0.05; </para>
      <para>NAA = 1-naphthaleneacetic acid; BAP = 6-Benzylaminopurine.</para>
      <para>Diferentes letras indican una diferencia signicativa dentro de cada columna basada en la prueba </para>
      <para>de LSD en p&lt;0.05; NAA = 1-Acido naftalenacético; BAP = 6-Benzilaminopurina. </para>
      <para>hoja completa con 4,5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 1 </para>
      <para>mg.NAA L</para>
      <para>-1</para>
      <para>presentaron porcentajes </para>
      <para>máximos de formación de callos, </para>
      <para>pero no había diferencia signicativa </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pf9">
      <para>269</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 261-278. Abril-Junio.</para>
      <para>Ebrahimzadeh et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>P. nervosum occurred on a medium </para>
      <para>supplemented with 5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + </para>
      <para>1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA. </para>
      <para>For the prevention of explant </para>
      <para>browning in vitro, the culture </para>
      <para>media was supplemented with 50 </para>
      <para>mg.L</para>
      <para>-1 </para>
      <para>ascorbic acid. Desilets et al. </para>
      <para>(1993) reported that in P. hortorum, </para>
      <para>browning was reduced by using half </para>
      <para>concentration of macro-nutrients and </para>
      <para>lower concentration than 2.2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>of BAP and NAA. Table (1) shows </para>
      <para>that the lowest browning rate in leaf </para>
      <para>segments was achieved in the medium </para>
      <para>containing 1.5 and 4.5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + </para>
      <para>1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA with petiole, 2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 0.1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA and, in intact </para>
      <para>leaf samples all the BAP and NAA </para>
      <para>combinations excluding 2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 0.1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA had the least </para>
      <para>percentage of explants with browning. </para>
      <para>In short, results showed that the </para>
      <para>intact leaf as well leaf segments </para>
      <para>slightly affected by oxidation process, </para>
      <para>whereas, petiole explants was more </para>
      <para>susceptible to oxidation. Arshad et </para>
      <para>al. (2012) reported that the highest </para>
      <para>survival rate in P. capitatum was </para>
      <para>obtained in the medium containing 2 </para>
      <para>mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BA + 1 or 2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA. Saxena </para>
      <para>et al. (2000) reported that using 0.5 </para>
      <para>mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP instead of kinetin + 0.1 </para>
      <para>mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA increased the survival </para>
      <para>rate in P. graveolens leaf explants. </para>
      <para>Conversely, 1,5 and 2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 1,5 and 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA with </para>
      <para>petiole explants and 1 and 1,5 mg.L</para>
      <para>-</para>
      <para>1</para>
      <para>BAP and NAA with leaf segments </para>
      <para>possessed the highest browning rate </para>
      <para>and hence, imposed negative effects on </para>
      <para>the growth and development of shoots </para>
      <para>and greatly reduced the survival </para>
      <para>rate. Overall, with all used PGR </para>
      <para>entre ellos (cuadro 1). Por lo tanto, </para>
      <para>el 1,5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA </para>
      <para>combinación sería un tratamiento </para>
      <para>adecuado para la proliferación de callos </para>
      <para>en esta especie independientemente </para>
      <para>del tipo del explante. La callogénesis </para>
      <para>depende de las concentraciones </para>
      <para>internas y externas de los PGR </para>
      <para>(Benazir et al., 2013). Por lo tanto, una </para>
      <para>concentración adecuada de auxinas y </para>
      <para>citoquinas es necesaria para tener </para>
      <para>una formación razonable de callos </para>
      <para>como etapa inicial de propagación </para>
      <para>in vitro. En Pelargonium rapaceum, </para>
      <para>Sukhumpinij et al. (2010) informaron </para>
      <para>que la producción de callos era óptima </para>
      <para>utilizando explantes de hojas en un </para>
      <para>medio enriquecido con 0,1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP </para>
      <para>+ 0,1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA. Además, Gharib </para>
      <para>(2005) demostró que la formación </para>
      <para>del callos y la organogénesis en P. </para>
      <para>nervosum ocurrieron en un medio </para>
      <para>complementado con 5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 1 </para>
      <para>mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA. </para>
      <para>Para la prevención del </para>
      <para>pardeamiento en los explantes </para>
      <para>in vitro, los medios de cultivo se </para>
      <para>complementaron con 50 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>de </para>
      <para>ácido ascórbico. Desilets et al. (1993) </para>
      <para>informaron que en P. hortorum, el </para>
      <para>pardeamiento se redujo mediante </para>
      <para>el uso de la concentración media de </para>
      <para>macronutrientes y una concentración </para>
      <para>menor que 2,2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>de BAP y NAA. </para>
      <para>El cuadro (1) muestra </para>
      <para>que la tasa de </para>
      <para>pardeamiento más baja en los segmentos </para>
      <para>de hoja se alcanzó en el medio que contiene </para>
      <para>1,5 y 4,5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA con </para>
      <para>pecíolo, 2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 0,1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA </para>
      <para>y, en las muestras de hojas completas, </para>
      <para>todas las combinaciones de BAP y </para>
      <para>NAA, excepto 2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 0,1 </para>
      <para>mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA tenía el menor porcentaje </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pfa">
      <para>270</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 261-278. Abril-Junio.</para>
      <para>Ebrahimzadeh et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>combinations, intact leaf samples had </para>
      <para>the highest survival rate. This is the </para>
      <para>rst report of using intact leaves from </para>
      <para>in vitro propagules. It seems that the </para>
      <para>great callus proliferation potential </para>
      <para>and survival rate of intact leaf might </para>
      <para>be related internal hormonal balance, </para>
      <para>the lack of injure to the leaf blade and </para>
      <para>hence, the low incidence of oxidation </para>
      <para>of phenolic compounds (Skoog and </para>
      <para>Miller, 1957). </para>
      <para>Shoot proliferation</para>
      <para>ANOVA results revealed that the </para>
      <para>shoot mean number was affected by </para>
      <para>treatments (p&lt;0.01), but shoot mean </para>
      <para>length was not signicantly affected </para>
      <para>by them. For shoot proliferation </para>
      <para>(table 1), the calli derived from all </para>
      <para>the explants were sub-cultured on </para>
      <para>1</para>
      <para>/</para>
      <para>2</para>
      <para>MS medium supplement by BAP and </para>
      <para>NAA combinations. After two weeks, </para>
      <para>developing shoots were noticeable. </para>
      <para>The </para>
      <para>responses in shoot production </para>
      <para>were different for the diverse treatment </para>
      <para>combinations. Petiole explants cultured </para>
      <para>on medium containing 2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP </para>
      <para>+ 0.1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA, intact leaf on 1 </para>
      <para>mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA and leaf </para>
      <para>segments grown on 1.5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP </para>
      <para>+ 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA had the signicantly </para>
      <para>highest shoot numbers (19.1, 15, and </para>
      <para>19.92, respectively). No signicant </para>
      <para>differences were determined among </para>
      <para>these treatments. Hassanein and </para>
      <para>Dorion (2005) reported the highest </para>
      <para>shoot number from the leaf segments </para>
      <para>of P. capitatum and P. graveolens </para>
      <para>cultured in a </para>
      <para>1</para>
      <para>/</para>
      <para>2</para>
      <para>MS medium containing </para>
      <para>0.5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA + 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP and </para>
      <para>zeatin. Zhou et al. (2007) noted that </para>
      <para>leaf segments and petiole explants </para>
      <para>produced the high number of shoots </para>
      <para>in a medium enriched with 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>de explantes con pardeamiento. En </para>
      <para>resumen, los resultados mostraron que </para>
      <para>los segmentos de hojas completas, así </para>
      <para>como los segmentos de hoja ligeramente </para>
      <para>afectados por el proceso de oxidación, </para>
      <para>mientras que, los explantes de pecíolo </para>
      <para>eran más susceptibles a la oxidación. </para>
      <para>Arshad et al. (2012) informaron que la </para>
      <para>tasa de supervivencia más alta en P. </para>
      <para>capitatum se obtuvo en el medio que </para>
      <para>contiene 2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BA + 1 o 2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA. Saxena et al. (2000) informaron </para>
      <para>que usando 0,5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP en lugar de </para>
      <para>kinetina + 0,1 mg. L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA aumentó la </para>
      <para>tasa de supervivencia en los explantes </para>
      <para>de hojas de P. graveolens. </para>
      <para>Por el contrario, 1,5 y 2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP </para>
      <para>+ 1.5 y 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA con explantes de </para>
      <para>pecíolo y 1 y 1,5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP y NAA </para>
      <para>con segmentos de hoja presentaron </para>
      <para>la tasa de pardeo más alta y por </para>
      <para>lo tanto, efectos negativos en el </para>
      <para>crecimiento y desarrollo de brotes </para>
      <para>y redujo en gran medida la tasa de </para>
      <para>supervivencia. En general, con todas </para>
      <para>las combinaciones de PGR usadas, las </para>
      <para>muestras de hojas completas tenían </para>
      <para>la tasa de supervivencia más alta. </para>
      <para>Este es el primer informe de uso de </para>
      <para>hojas completas en la propagación in </para>
      <para>vitro. Parece que el gran potencial </para>
      <para>de proliferación del callo y la tasa </para>
      <para>de supervivencia de la hoja intacta </para>
      <para>podrían estar relacionados con el </para>
      <para>equilibrio hormonal interno, la falta </para>
      <para>de daño a la hoja y, por lo tanto, </para>
      <para>la baja incidencia de oxidación de </para>
      <para>compuestos fenólicos (Skoog y Miller, </para>
      <para>1957). </para>
      <para>Proliferación de brotes</para>
      <para>Los resultados de ANOVA </para>
      <para>revelaron que el promedio de brotes </para>
      <para>se vió afectado por los tratamientos </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pfb">
      <para>271</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 261-278. Abril-Junio.</para>
      <para>Ebrahimzadeh et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>BAP + 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA. However, due to </para>
      <para>our results, it seems that intact leaves </para>
      <para>yielded more mean shoot number in </para>
      <para>proliferation of P. odoratissimum. </para>
      <para>According to the ndings of Zuraida </para>
      <para>et al. (2013), using 3-5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP </para>
      <para>reduced the shoot proliferation in </para>
      <para>Pelargonium species. Therefore, for </para>
      <para>the suitable proliferation, we need a </para>
      <para>dened concentration of cytokinins. </para>
      <para>According to table 1 petiole developed </para>
      <para>the shortest shoots on all PGR </para>
      <para>combinations except 2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 0.1 </para>
      <para>mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA, shoots from leaf segments </para>
      <para>with 1.5, 2 and 4.5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 0.1 </para>
      <para>and 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA and intact leaf </para>
      <para>samples in all treatment combinations </para>
      <para>except 2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 0.1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA </para>
      <para>had tallest shoots, with no signicant </para>
      <para>differences among them. Accordingly, </para>
      <para>the longest shoots in leaf sections and </para>
      <para>petiole of P. odoratissimum belonged </para>
      <para>to the medium containing 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA + 5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP (Ghanem et al., </para>
      <para>2008). </para>
      <para>Brown and Charlwood (1986) </para>
      <para>demonstrated that the induction and </para>
      <para>subsequent elongation of adventitious </para>
      <para>shoots were dependent upon the </para>
      <para>different factors such as type and </para>
      <para>concentration of PGRs especially </para>
      <para>auxins and cytokinins. Therefore, high </para>
      <para>cytokinin to auxin ratio is the factor </para>
      <para>that affects the proliferation and </para>
      <para>shoot length in Pelargonium species </para>
      <para>(Brown and Charlwood, 1986; Dunbar </para>
      <para>and Stephens, 1989). High cytokinin </para>
      <para>and low auxin rates led to increased </para>
      <para>shoot formation and elongation. Auxin </para>
      <para>endogenous rates surely affect the </para>
      <para>phenomenon. It has been reported </para>
      <para>by former authors where they noted </para>
      <para>that high cytokinin rates improves the </para>
      <para>(p&lt;0,01), pero la longitud promedio del </para>
      <para>brote no se afecta signicativamente </para>
      <para>por ellos. Para la proliferación de </para>
      <para>brotes (cuadro 1), los callos derivadas </para>
      <para>de todos los explantes fueron sub-</para>
      <para>cultivados en suplemento medio de </para>
      <para>1</para>
      <para>/</para>
      <para>2</para>
      <para>MS por combinaciones de BAP y </para>
      <para>NAA. Después de dos semanas, los </para>
      <para>desarrollos de brotes se notaron. Las </para>
      <para>respuestas en la producción de brotes </para>
      <para>fueron diferentes para las diversas </para>
      <para>combinaciones de tratamiento. Los </para>
      <para>explantes de pecíolo cultivado en medio </para>
      <para>de cultivo que contenian 2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP </para>
      <para>+ 0,1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA, hoja completa y 1 </para>
      <para>mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA y segmentos </para>
      <para>de hoja cultivados y 1.5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + </para>
      <para>1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA presentaron el número </para>
      <para>de brote signicativamente más altos </para>
      <para>(19,1; 15 y 19,92, respectivamente). </para>
      <para>No se determinaron diferencias </para>
      <para>signicativas entre estos tratamientos. </para>
      <para>Hassanein y Dorion (2005) informaron </para>
      <para>el número de brotes más alto de los </para>
      <para>segmentos de hojas de P. capitatum y P. </para>
      <para>graveolens cultivadas en un medio de </para>
      <para>1</para>
      <para>/</para>
      <para>2</para>
      <para>MS que contenia 0,5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA + 1 </para>
      <para>mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP y zeatin. Zhou et al. (2007) </para>
      <para>señalaron que los segmentos de hojas </para>
      <para>y explantes de pecíolos producían el </para>
      <para>alto número de brotes en un medio de </para>
      <para>cultivo enriquecido con 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP </para>
      <para>+ 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA. Sin embargo, debido </para>
      <para>a nuestros resultados, parece que las </para>
      <para>hojas intactas dieron más número </para>
      <para>medio de brotes en la proliferación </para>
      <para>de P. odoratissimum. Según las </para>
      <para>conclusiones de Zuraida et al. (2013), </para>
      <para>utilizando 3 - 5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP redujo la </para>
      <para>proliferación de brotes en especies de </para>
      <para>Pelargonium. Se puede inferir que, </para>
      <para>para la proliferación adecuada, es </para>
      <para>necesaria una concentración denida </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pfc">
      <para>
        <inlinegraphic fileref="embedded:Image3" width="4.7362inch" depth="1.361inch"/>
      </para>
      <para>272</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 261-278. Abril-Junio.</para>
      <para>Ebrahimzadeh et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>proliferation and shoot organogenesis. </para>
      <para>Moreover, high organogenesis </para>
      <para>potential in Pelargonium species </para>
      <para>has been reported by using different </para>
      <para>explants like leaf and petioles (Dunbar </para>
      <para>and Stephens, 1989; Yi Qy et al., 2010).</para>
      <para>In our experiment, leaf segments </para>
      <para>with 1.5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA, </para>
      <para>petioles with 2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 0.1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA and intact leaves with 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA achieved the </para>
      <para>lowest rate of browning, the highest </para>
      <para>callus production with the subsequent </para>
      <para>greatest shoot number and tallest </para>
      <para>shoots. </para>
      <para>Rooting and acclimatization </para>
      <para>ANOVA (table 2) results revealed </para>
      <para>that the rooting related characteristics </para>
      <para>such as rooting percentage and </para>
      <para>mean number and length of roots </para>
      <para>were affected by NAA concentration </para>
      <para>(p&lt;0.01). Furthermore, mean number </para>
      <para>and length of roots were signicantly </para>
      <para>(p&lt;0.01) affected by explant type. Just </para>
      <para>Table 2. ANOVA for the effects of NAA on roots characteristics of </para>
      <para>Pelargonium odoratissimum explants.</para>
      <para>Cuadro 2. ANOVA para los efectos de NAA en las características de raíces </para>
      <para>de explantes de Pelargonium odoratissimum. </para>
      <para>Mean Squares</para>
      <para>Source of variation DF Rooting (%) Mean root number Mean root length</para>
      <para>NAA 1 267.27** 248.88** 9.36**</para>
      <para>Explant types 2 1.16</para>
      <para>ns</para>
      <para>39.04** 1.72**</para>
      <para>NAA × Explant types 2 41.31</para>
      <para>ns</para>
      <para>6.25</para>
      <para>ns</para>
      <para>0.83*</para>
      <para>error 81.32 3.21 0.27</para>
      <para>CV 12.56 32.37 21.86</para>
      <para>** Signicant at p&lt;0.01, * signicant at p&lt;0.05 and ns: non-signicant. NAA = 1-naphthaleneacetic </para>
      <para>acid. </para>
      <para>** Signicativo en p&lt;0,01; * signicativo en p&lt; 0,05 y ns: no signicativo. NAA = Acido </para>
      <para>1-naftalenacético.</para>
      <para>de citoquinas. Según la cuadro 1, </para>
      <para>pecíolo desarrollado los brotes más </para>
      <para>cortos en todas las combinaciones </para>
      <para>de PGR excepto 2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 0,1 </para>
      <para>mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA, brotes de segmentos de </para>
      <para>hoja con 1,5; 2 y 4,5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 0,1 </para>
      <para>y 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA y muestras de hojas </para>
      <para>intactas en todas las combinaciones </para>
      <para>de tratamiento excepto 2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP </para>
      <para>+ 0,1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA, tuvo los brotes más </para>
      <para>altos, sin diferencias signicativas </para>
      <para>entre ellos. En consecuencia, los </para>
      <para>brotes más largos en secciones de </para>
      <para>hojas y pecíolos de P. odoratissimum </para>
      <para>pertenecían al medio de cultivo que </para>
      <para>contenía 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA + 5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP </para>
      <para>(Ghanem et al., 2008). </para>
      <para>Brown y Charlwood (1986) </para>
      <para>demostraron que la inducción y </para>
      <para>posterior elongación de brotes </para>
      <para>adventicios dependían de los </para>
      <para>diferentes factores como el tipo y la </para>
      <para>concentración de PGR, especialmente </para>
      <para>auxinas y citoquinas. Por lo tanto, </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pfd">
      <para>
        <inlinegraphic fileref="embedded:Image4" width="4.4791inch" depth="2.5138inch"/>
      </para>
      <para>273</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 261-278. Abril-Junio.</para>
      <para>Ebrahimzadeh et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>root length was inuenced (p&lt;0.05) </para>
      <para>by the interactions of treatment and </para>
      <para>explant type.</para>
      <para>Figure 1 shows that rooting </para>
      <para>percentage of the shoots derived from </para>
      <para>leaf segments, petioles and intact </para>
      <para>leaves was about 58 % and 98 % at </para>
      <para>0.1 and 0.2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA, respectively. </para>
      <para>NAA concentration suitable for </para>
      <para>rooting for all three explants was 0.2 </para>
      <para>mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>Boase et al. (1998), Zhou et </para>
      <para>al. (2007) and Zuraida et al. (2013) </para>
      <para>reported the same NAA concentration </para>
      <para>for the best rooting percentage and </para>
      <para>root number in Pelargonium species </para>
      <para>as well. Brown and Charlwood (1986) </para>
      <para>as well as Ghanem et al. (2008) also </para>
      <para>reported that for P. graveolens. For </para>
      <para>root number, 0.2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA was </para>
      <para>the best concentration. Among the </para>
      <para>explants, intact leaves had the highest </para>
      <para>mean root number (table 3). </para>
      <para>la alta proporción de citoquina a </para>
      <para>auxina es el factor que afecta a la </para>
      <para>proliferación y la longitud del brote </para>
      <para>en especies de Pelargonium (Brown y </para>
      <para>Charlwood, 1986; Dunbar y Stephens, </para>
      <para>1989). Las altas de citoquina y bajas </para>
      <para>tasas de auxina indujeron un aumento </para>
      <para>de la formación y elongación del </para>
      <para>brote. Las tasas endógenas de auxina </para>
      <para>seguramente afectan el fenómeno. </para>
      <para>Algunos autores al observado que </para>
      <para>altas tasas de citoquinas mejora la </para>
      <para>proliferación y organogénesis del </para>
      <para>brotes. Además, se ha noticado un </para>
      <para>alto potencial de organogénesis en </para>
      <para>especies de Pelargonium mediante </para>
      <para>el uso de diferentes explantes como </para>
      <para>hojas y pecíolos (Dunbar y Stephens, </para>
      <para>1989; Yi Qy et al., 2010). En nuestro </para>
      <para>experimento, segmentos de hoja </para>
      <para>con 1,5 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA, pecíolos con 2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + </para>
      <para>Figure 1. Effect of NAA concentration on the percentage of rooting of Pelargonium </para>
      <para>odoratissimum in vitro. NAA = 1-naphthaleneacetic acid.</para>
      <para>Figura 1. Efecto de concentración de NAA en el porcentaje de enraizamiento de </para>
      <para>Pelargonium odoratissimum in vitro. NAA = 1-ácido naftalenacético.</para>
    </sect2>
    <sect2 id="pfe">
      <para>
        <inlinegraphic fileref="embedded:Image5" width="4.9583inch" depth="1.1665inch"/>
      </para>
      <para>274</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 261-278. Abril-Junio.</para>
      <para>Ebrahimzadeh et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>As an accepted rule in tissue culture </para>
      <para>studies, auxin alone or in combination </para>
      <para>with small ratios of cytokinins are </para>
      <para>necessary for the root primordial </para>
      <para>initiation (Zuraida et al., 2013). </para>
      <para>Internal hormonal balance is another </para>
      <para>major factor that affects the rooting </para>
      <para>potential of different explants. Figure </para>
      <para>2 also clearly shows that for all explant </para>
      <para>types, again 0.2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA was the </para>
      <para>best concentration for the length of </para>
      <para>roots. Boase et al. (1998) reported that </para>
      <para>increasing NAA concentration up to </para>
      <para>0.2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>improved root formation </para>
      <para>in P. odoratissimum. Several former </para>
      <para>studies claim that rooting potential in </para>
      <para>Pelargonium species is related to the </para>
      <para>shoots quality. </para>
      <para>Zuraida et al. (2013) showed that </para>
      <para>the highest rooting percentage and </para>
      <para>number was obtained in a medium </para>
      <para>enriched with 0.2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>IBA + IAA. </para>
      <para>Similarly, Zhou et al. (2007) reported </para>
      <para>the same concentration of NAA for </para>
      <para>the rooting of Pelargonium plants. </para>
      <para>As all physiological processes, rooting </para>
      <para>potential and its subsequent growth </para>
      <para>0,1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA y hojas completas </para>
      <para>con 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP </para>
      <para>+ 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA </para>
      <para>presentaron la tasa más baja de </para>
      <para>pardeamiento, la mayor producción de </para>
      <para>callos con el mayor número de brotes </para>
      <para>subsiguiente y los brotes más altos. </para>
      <para>Enraizamiento y aclimatación </para>
      <para>Los resultados de ANOVA (Cuadro </para>
      <para>2) revelaron que las características </para>
      <para>relacionadas con el enraizamiento, </para>
      <para>como el porcentaje de enraizamiento y el </para>
      <para>número medio y la longitud de las raíces </para>
      <para>se vieron afectadas por la concentración </para>
      <para>de NAA (p&lt;0,01). Además, el número </para>
      <para>y la longitud de las raíces se vieron </para>
      <para>signicativamente (p&lt;0,01) afectados </para>
      <para>por el tipo de explante. La longitud de </para>
      <para>la raíz fue inuenciada (p&lt;0,05) por las </para>
      <para>interacciones del tratamiento y el tipo </para>
      <para>de explante. </para>
      <para>La gura (1) muestra que el </para>
      <para>porcentaje de enraizamiento de </para>
      <para>los brotes derivados de segmentos </para>
      <para>foliares, pecíolos y hojas completas </para>
      <para>fue de aproximadamente el 58 % </para>
      <para>y el 98 % en 0,1 y 0,2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA, </para>
      <para>respectivamente. La concentración de </para>
      <para>Table 3. NAA concentration and explant type effects on root number of </para>
      <para>Pelargonium odoratissimum in vitro.</para>
      <para>Cuadro 3. Efectos de concentración de NAA y tipo de explante en el </para>
      <para>número de raíces de Pelargonium odoratissimum in vitro.</para>
      <para>NAA concentrations and explant types Root number</para>
      <para>0.1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA 3.50</para>
      <para>b</para>
      <para>0.2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA 7.57</para>
      <para>a</para>
      <para>Leaf segments 4.82</para>
      <para>b</para>
      <para>Petiole 4.64</para>
      <para>b</para>
      <para>Intact leaf 7.15</para>
      <para>a</para>
      <para>Different letters show statistically signicant differences based on LSD test at p &lt;0.05.</para>
      <para>Letras diferentes muestran diferencias estadísticas signicativas basadas en la prueba de LSD </para>
      <para>en p&lt;0,05.</para>
    </sect2>
    <sect2 id="pff">
      <para>
        <inlinegraphic fileref="embedded:Image6" width="4.9098inch" depth="2.2016inch"/>
      </para>
      <para>275</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 261-278. Abril-Junio.</para>
      <para>Ebrahimzadeh et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>Figure 2. NAA concentration effect on root length of Pelargonium odoratissimum in</para>
      <para>vitro. NAA = 1-naphthaleneacetic acid.</para>
      <para>Figura 2. Efecto de concentración de NAA sobre la longitud de la raíz de Pelargonium </para>
      <para>odoratissimum in vitro. NAA = 1-ácido naftalenacético.</para>
      <para>and development are dependent </para>
      <para>on hormonal balance inside the </para>
      <para>plant tissue. It seems that in some </para>
      <para>plant organs, the low amount of </para>
      <para>internal auxins necessitates the use </para>
      <para>of compensating concentration of </para>
      <para>exogenous auxins. </para>
      <para>Generally, root number and length </para>
      <para>affect the nutrients and water uptake </para>
      <para>and hence, hugely inuence the </para>
      <para>plantlets establishment and growth. </para>
      <para>Finally, healthy rooted plantlets </para>
      <para>were selected to transfer to the pots </para>
      <para>containing peat-moss: perlite (1:1) </para>
      <para>in growth chambers under 16:8 </para>
      <para>hour photoperiod under 23 ± 1 </para>
      <para>º</para>
      <para>C </para>
      <para>and 20 ± 1 </para>
      <para>º</para>
      <para>C</para>
      <para>regime. One month </para>
      <para>later, the number of survived plants </para>
      <para>were recorded. Acclimatization was </para>
      <para>completely successful with 90 % of </para>
      <para>transferred plants were adapted to </para>
      <para>the greenhouse conditions.</para>
      <para>NAA adecuada para el enraizamiento </para>
      <para>de los tres explantes fue de 0,2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>. </para>
      <para>Boase et al. (1998), Zhou et al. (2007) </para>
      <para>y Zuraida et al. (2013) informaron </para>
      <para>también la misma concentración de </para>
      <para>NAA para el mejor porcentaje de </para>
      <para>enraizamiento y el número de raíces </para>
      <para>en las especies de Pelargonium. </para>
      <para>Brown y Charlwood (1986) así </para>
      <para>como Ghanem et al. (2008) también </para>
      <para>informaron que en P. graveolens. para </para>
      <para>el número de raíz, 0,2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA </para>
      <para>fue la mejor concentración. Entre los </para>
      <para>explantes, las hojas completas tenían </para>
      <para>el número medio más alto de raíces </para>
      <para>(cuadro 3). </para>
      <para>Como regla aceptada en los </para>
      <para>estudios de cultivo de tejidos, la </para>
      <para>auxina sola o en combinación con </para>
      <para>pequeñas proporciones de citoquinas </para>
      <para>son necesarias para la iniciación </para>
      <para>primordial de la raíz (Zuraida et </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pf10">
      <para>
        <inlinegraphic fileref="embedded:Image7" width="2.3264inch" depth="0.0417inch"/>
      </para>
      <para>276</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 261-278. Abril-Junio.</para>
      <para>Ebrahimzadeh et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>Conclusion </para>
      <para>This study was conducted to </para>
      <para>establish an efcient micropropagation </para>
      <para>protocol for P. odoratissimum. The </para>
      <para>overall results showed that in vitro </para>
      <para>derived intact leaf explants were </para>
      <para>superior to the other two explants </para>
      <para>(petiole and leaf segments), when </para>
      <para>considering their higher callus, </para>
      <para>shoot and root organogenesis and </para>
      <para>proliferation potential. Nonetheless, </para>
      <para>the BAP-NAA combination rates </para>
      <para>determined to alarge extent the </para>
      <para>organogenesis potential. The highest </para>
      <para>callogenesis and shoot organogenesis </para>
      <para>were recorded for intact leaves on MS </para>
      <para>medium supplemented with 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA, with similar </para>
      <para>results for leaf segments when grown </para>
      <para>on 1.5 and 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP and NAA, </para>
      <para>respectively, whereas petioles required </para>
      <para>2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP and 0.1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA </para>
      <para>to bring out similar organogenesis. </para>
      <para>Acclimatization was 90 % successful </para>
      <para>under greenhouse conditions.</para>
      <para>al., 2013). El equilibrio hormonal </para>
      <para>interno es otro factor importante que </para>
      <para>afecta el potencial de enraizamiento </para>
      <para>de diferentes explantes. La gura 2 </para>
      <para>también muestra claramente que para </para>
      <para>todos los tipos de explantes, de nuevo 0,2 </para>
      <para>mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA fue la mejor concentración </para>
      <para>para la longitud </para>
      <para>de las raíces. Boase et </para>
      <para>al. (1998) informaron que el aumento </para>
      <para>de la concentración de NAA hasta 0,2 </para>
      <para>mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>mejoró la formación de raíces </para>
      <para>en P. odoratissimum. Varios estudios </para>
      <para>anteriores arman que el potencial </para>
      <para>de enraizamiento en especies de </para>
      <para>Pelargonium está relacionado con la </para>
      <para>calidad de los brotes. </para>
      <para>Zuraida et al. (2013) mostraron </para>
      <para>que el mayor porcentaje y número </para>
      <para>de enraizamiento se obtuvo en un </para>
      <para>medio de cultivo enriquecido con </para>
      <para>0,2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>IBA + IAA. Del mismo </para>
      <para>modo, Zhou et al. (2007) informaron </para>
      <para>de la misma concentración de NAA </para>
      <para>para el enraizamiento de plantas de </para>
      <para>Pelargonium. Como todos los procesos </para>
      <para>siológicos, potencial de enraizamiento </para>
      <para>y su posterior crecimiento y desarrollo </para>
      <para>dependen del equilibrio hormonal </para>
      <para>dentro del tejido vegetal. Parece </para>
      <para>que, en algunos órganos vegetales, </para>
      <para>la baja cantidad de auxinas internas </para>
      <para>requiere el uso de la concentración </para>
      <para>compensadora de auxinas exógenas. </para>
      <para>Generalmente, el número de </para>
      <para>raíces y la longitud afectan los </para>
      <para>nutrientes y la absorción de agua y, </para>
      <para>por lo tanto, inuyen enormemente </para>
      <para>en el establecimiento y crecimiento </para>
      <para>de las plántulas. Finalmente, se </para>
      <para>seleccionaron plántulas de raíces sanas </para>
      <para>para trasplantar a las materas que </para>
      <para>contienen sustrato de turba-musgo: </para>
      <para>perlita (1:1) en cámaras de crecimiento </para>
      <para>inferiores a 16:8 horas de fotoperiodo </para>
      <para>bajo 23 ± régimen de 1°C y 20 ± 1°C. Un </para>
      <para>mes más tarde, se registró el número de </para>
      <para>plantas desarrolladas exitosamente. </para>
      <para>El acondicionamiento presento valores </para>
      <para>altamente signicativos, el 90 % de las </para>
      <para>plantas transferidas se adaptaron a </para>
      <para>las condiciones de invernadero.</para>
      <para>Conclusión </para>
      <para>Este estudio se llevó a cabo </para>
      <para>para establecer un protocolo de </para>
      <para>End of English Version</para>
    </sect2>
    <sect2 id="pf11">
      <para>277</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 261-278. Abril-Junio.</para>
      <para>Ebrahimzadeh et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>micropropagación eciente para </para>
      <para>P. odoratissimum. Los resultados </para>
      <para>generales mostraron que los </para>
      <para>explantes de hojas completas </para>
      <para>derivados in vitro eran superiores </para>
      <para>a los otros dos explantes (pecíolo y </para>
      <para>segmentos foliares), al considerar su </para>
      <para>mayor potencial en el desarrollo de </para>
      <para>la callosidad, brote, organogénesis </para>
      <para>de raíz y proliferación. No obstante, </para>
      <para>las tasas de combinación BAP-NAA </para>
      <para>determinaron en gran medida el </para>
      <para>potencial de organogénesis. Los datos </para>
      <para>de mayor resultado en desarrollo </para>
      <para>de callogénesis y organogénesis de </para>
      <para>brotes se registraron para las hojas </para>
      <para>completas en el medio de cultivo MS </para>
      <para>suplementado con 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP + 1 </para>
      <para>mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA, con resultados similares </para>
      <para>para segmentos de foliares cuando </para>
      <para>se cultiva en 1.5 y 1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP y </para>
      <para>NAA, respectivamente, mientras </para>
      <para>que los pecíolos requirió 2 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>BAP y 0.1 mg.L</para>
      <para>-1</para>
      <para>NAA para sacar a </para>
      <para>la salida organogénesis similar. El </para>
      <para>acondicionamiento tuvo éxito en un </para>
      <para>90 % en condiciones de invernadero.</para>
      <para>Cited literature</para>
      <para>Agarwal, R.K. and A.S. Ranu. 2000. </para>
      <para>Regeneration of plantlets from </para>
      <para>leaf and petiole explants of </para>
      <para>Pelargonium hortorum. In Vitro </para>
      <para>Cell. Dev. Biol. Plant. 36:392-397. </para>
      <para>Arshad, M., J. Silvestre, G. Merlina, </para>
      <para>C. Dumat, E. Pinelli and J. </para>
      <para>Kellerhoff. 2012. Thidiazuron- </para>
      <para>induced shoot organogenesis from </para>
      <para>mature leaf explants of scented </para>
      <para>Pelargonium capitatum cultivars. </para>
      <para>Plant. Cell. Tiss. Org. Cult. 108: </para>
      <para>315-322.</para>
      <para>Benazir, J.F., R. Suganthi, P. Chandrika </para>
      <para>and B. Mathithumilan. 2013. In vitro </para>
      <para>regeneration and transformation </para>
      <para>studies on Pelargonium graveolens </para>
      <para>(Geranium) an important medicinal </para>
      <para>and aromatic plant. J. Med. Plant </para>
      <para>Res. 7 (38): 2815-2822.</para>
      <para>Bhuse, V.H., B.L. Lad, D.K. Patil, and </para>
      <para>V.M. Karade. 2003. Effect of time of </para>
      <para>planting, type of cutting and plant </para>
      <para>growth regulators on rooting in </para>
      <para>Pelargonium graveolens L. Herrit. </para>
      <para>Indian J. Agric. Res. 3:29-33 </para>
      <para>Boase, M.R., J.M. Bradley and N.K. </para>
      <para>Borst. 1998. An improved </para>
      <para>method for transformation of </para>
      <para>regal pelargonium (Pelargonium </para>
      <para>x domesticum Dubonnet) by </para>
      <para>Agrobacterium tumefaciens. Plant. </para>
      <para>Sci. 139:59–69.</para>
      <para>Brown, J.T. and B.V. Charlwood. 1986. </para>
      <para>The accumulation of essential oils </para>
      <para>by tissue cultures of Pelargonium </para>
      <para>fragrans (Willd). Fed. Europ. </para>
      <para>Biochem. Soc. 204 (1): 117- 120.</para>
      <para>Desilets, H., Y. Desjardins and R. </para>
      <para>Belanger. 1993. Clonal propagation </para>
      <para>of Pelargonium x hortorum through </para>
      <para>tissue culture: Effects of salt dilution </para>
      <para>and growth regulator concentration. </para>
      <para>Can. J. Plant. Sci. 73: 871-878.</para>
      <para>Dunbar, K.B. and C.T. Stephens. 1989. </para>
      <para>Shoot regeneration of hybrid seed </para>
      <para>geranium (Pelargonium x hortorum) </para>
      <para>and regal geranium (Pelargonium x </para>
      <para>domesticum) from primary callus </para>
      <para>cultures. Plant Cell, Tiss. Org. Cult. </para>
      <para>19: 13–21.</para>
      <para>Ghanem, S. A., U.I. Aly, A.A. El-kazzaz, </para>
      <para>A. Abdel-Samad and N.M. Arafa. </para>
      <para>2008. In vitro regeneration of </para>
      <para>Pelargonium graveolens. J. Genet. </para>
      <para>Eng. Biotechnol. 6 (2): 15-18. </para>
      <para>Gharib, F.A.L. 2005. Changes in regeneration </para>
      <para>and oil accumulation of Pelargonium </para>
      <para>nervosum under various culture </para>
      <para>condition. J. Bio. Sci. 5(5): 670-677.</para>
      <para>Gupta, R., S.K. Gupta, S. Banerjee, G.R. </para>
      <para>Mallavarapu and S. Kumar. 2002. </para>
      <para>Micropropagation of Elit cultivars of </para>
      <para>rose- scented Geranium (Pelargonium </para>
      <para>graveolens L.’ Herit.) for industrial </para>
      <para>production of propagules. Indian. J. </para>
      <para>Biotechnol. 1: 286-291.</para>
      <para>Hassanein, A. and N. Dorion. 2005. Efcient </para>
      <para>plant regeneration system from </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pf12">
      <para>278</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2021, 38: 261-278. Abril-Junio.</para>
      <para>Ebrahimzadeh et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>leaf discs of zonal (Pelargonium </para>
      <para>x Hortorum) and two scented (P. </para>
      <para>capitatum and P. graveolens) </para>
      <para>geraniums. Plant. Cell. Tiss. Org. </para>
      <para>Cult. 83: 231-240.</para>
      <para>Linsmaier, E.M., F. Skoog. 1965. Organic </para>
      <para>growth factor requirements of tobacco </para>
      <para>tissue cultures. Physiol. Plant. 18: </para>
      <para>100–127.</para>
      <para>Murashige, T. and F. Skoog. 1962. A revised </para>
      <para>medium for rapid growth and bio-</para>
      <para>assays with tobacco tissue cultures. </para>
      <para>Physiol. Plant. 15: 473-497.</para>
      <para>Rao, P.V.L. 1994. In vitro plant regeneration </para>
      <para>of scented- leaved geranium </para>
      <para>Pelargonium graveolens. Plant. Sci. </para>
      <para>98:193-198. </para>
      <para>Saxena, G., S. Banerjee, L. Rahman, G.R. </para>
      <para>Mallavarapu, S. Sharma and S. </para>
      <para>Kumar. 2000. An efcient in vitro </para>
      <para>procedure for micropropagation and </para>
      <para>generation of somaclones of rose </para>
      <para>scented Pelargonium. Plant. Sci. 155: </para>
      <para>133–140.</para>
      <para>Skoog, F. and C.O. Miller. 1957. Chemical </para>
      <para>regulation of growth and organ </para>
      <para>formation in plant tissues cultured in </para>
      <para>vitro. Symp. Soc. Exp. Biol. 11: 118-</para>
      <para>131.</para>
      <para>SPSS software. 2012. SPSS user’s guide, v. </para>
      <para>21. IBM Corporation. New York, NY, </para>
      <para>USA.</para>
      <para>Sukhumpinij, P., F. Kakihara and M. Kato. </para>
      <para>2010. In vitro regeneration from </para>
      <para>mature leaf explants of Pelargonium </para>
      <para>rapaceum (L.) L’Hérit. Sci. Hortic. </para>
      <para>126: 385–389.</para>
      <para>Tembe, R.P. and M. Deodhar. 2010. Clonal </para>
      <para>propagation different cultivars of </para>
      <para>Pelargonium graveolens (L’ Herit) </para>
      <para>viz Reunion, Bourbon and Egyptian. </para>
      <para>Biotechnol. 9 (4): 492–498.</para>
      <para>Wojtania, A., E. Gabryszewska and A. </para>
      <para>Marasek. 2004. Regeneration of </para>
      <para>Pelargonium × hederaefolium ‘Bonete’ </para>
      <para>from petiole explants. Acta. Physiol. </para>
      <para>Plant. 26 (3): 255-262.</para>
      <para>Yi QY, X., K.G. Jiang and M.H.T. Ren. </para>
      <para>2010. Study on in vitro shoot culture </para>
      <para>of Pelargonium graveolens and its </para>
      <para>production. J. S. China. J. Agri. 2: 59-</para>
      <para>67.</para>
      <para>Zhou, J., G. Ma, E. Bunn and X. Zhang. 2007. </para>
      <para>In vitro shoot organogenesis from </para>
      <para>Pelargonium Citrosum Vanleenii </para>
      <para>leaf and petiole explants. Flori. Orna. </para>
      <para>Biotech. 1(2): 147-149.</para>
      <para>Zuraida, A.R., M.A. Shukri, O. Ayu Nazreena </para>
      <para>and Z. Zamri. 2013. Improved </para>
      <para>micropropagation of biopesticidal </para>
      <para>plant, Pelargonium radula via direct </para>
      <para>shoot regeneration. Am. J. Res. </para>
      <para>Commun. 1(1): 1-12. </para>
    </sect2>
  </sect1>
  <para><inlinegraphic fileref="embedded:Image8" width="0.6665inch" depth="0.6665inch"/> </para>
</article>
