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      </para>
      <para>368</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2020, 37: 368-386. Octubre-Diciembre.</para>
      <para>ISSN 2477-9407</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Recibido el 05-04-2020 . Aceptado el 15-06-2020.</para>
      <para>*Autor de correspondencia. Correo electrónico: lhernandez@cibnor.mx</para>
      <para>Efectividad del extracto etanólico de Lippia </para>
      <para>palmeri Wats para el manejo de Fusarium spp. en </para>
      <para>semillas de garbanzo </para>
      <para>Effectiveness of ethanolic extract of Lippia palmeri Wats </para>
      <para>for the management of Fusarium spp. in chickpea seeds</para>
      <para>Efetividade do extrato etanólico de Lippia palmeri Wats </para>
      <para>no manejo de Fusarium spp. em sementes de grão de bico</para>
      <para>Mirella Romero-Bastidas</para>
      <para>1</para>
      <para>, Juan Jose Reyes-Perez</para>
      <para>2</para>
      <para>, Esli </para>
      <para>Alexis Mayer-Felix</para>
      <para>1</para>
      <para>, José Saúl Hernandez-Rubio</para>
      <para>1</para>
      <para>, Pablo </para>
      <para>Misael Arce-Amezquita</para>
      <para>1</para>
      <para>, Luis Guillermo Hernandez-</para>
      <para>Montiel</para>
      <para>3*</para>
      <para>1</para>
      <para>Departamento Académico de Agronomía, Universidad Autónoma de Baja </para>
      <para>California Sur. Carretera al sur km 5.5, Col. El Mezquitito. 23080, La Paz, </para>
      <para>Baja California Sur. México. Correo electrónico: (MR) miromero@uabcs.</para>
      <para>mx, </para>
      <para>; (EM) eslimayer@gmail.com, ; (JH) saulhr@gmail.com ; (PA) </para>
      <para>parce@uabcs.mx, </para>
      <para>. </para>
      <para>2</para>
      <para>Universidad Técnica Estatal de Quevedo. Av. Quito,</para>
      <para>Km 1,5 vía a Santo Domingo, Quevedo, Los Ríos, Ecuador. Correo </para>
      <para>electrónico: jreyes@uteq.edu.ec, </para>
      <para>. </para>
      <para>3</para>
      <para>Centro de Investigaciones Biológicas </para>
      <para>del Noroeste. Calle Instituto Politécnico Nacional 195. Col. Playa Palo </para>
      <para>de Santa Rita Sur. 23096, La Paz, Baja California Sur, México. Correo </para>
      <para>electrónico: lhernandez@cibnor.mx, .</para>
      <para>Resumen</para>
      <para>El garbanzo es un cultivo de importancia mundial debido a su valor nutricional, </para>
      <para>sin embargo, la cosecha se ve afectada por enfermedades en semillas y raíz </para>
      <para>ocasionadas por Fusarium spp., y para su control se aplican fungicidas sintéticos, </para>
      <para>por lo que los productos naturales basados en extractos de plantas pueden ser una </para>
      <para>opción para el manejo sustentable de enfermedades de este cultivo. El objetivo </para>
      <para>de esta investigación fue determinar la eciencia in vitro e in vivo del extracto </para>
      <para>etanólico de Lippia palmeri</para>
      <para>para el control de Fusarium oxysporum y F. solani </para>
      <para>en semillas de garbanzo. Al medio PDA se le añadió 500, 1000 y 2000 ppm del </para>
      <para>extracto etanólico de L. palmeri más un disco de agar de cada patógeno y se midió </para>
      <para>la inhibición del crecimiento micelial. Semillas de garbanzo fueron sumergidas </para>
      <para>DOI: https://doi.org/10.47280/RevFacAgron(LUZ).v37.n4.03</para>
      <para/>
    </sect2>
    <sect2 id="pf2">
      <para>369</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2020, 37: 368-386. Octubre-Diciembre. </para>
      <para>Romero-Bastidas et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>en cada concentración de L. palmeri por cinco y 10 min, posteriormente, cada </para>
      <para>semilla se inoculó con F. oxysporum y F. solani y se determinó la incidencia de </para>
      <para>la enfermedad y el número de semillas germinadas. Las tres concentraciones de </para>
      <para>L. palmeri inhibieron in vitro a ambos patógenos. En las semillas, el extracto </para>
      <para>etanólico de L. palmeri disminuyó la incidencia de F. solani y mantuvo por </para>
      <para>encima del 80 % la germinación. Para F. oxysporum solo la dosis más alta del </para>
      <para>extracto etanólico y el mayor tiempo de exposición disminuyó 20 % la incidencia y </para>
      <para>la germinación fue menor de 25 %. El extracto etanólico de L. palmeri puede ser </para>
      <para>una opción para disminuir enfermedades ocasionas por hongos topatógenos del </para>
      <para>suelo en semillas de garbanzo </para>
      <para>Palabras clave: antifúngicos, Fusarium solani, Fusarium oxysporum, </para>
      <para>germinación. </para>
      <para>Abstract</para>
      <para>Chickpea is a crop of world importance due to its nutritional value; however, </para>
      <para>seed and root diseases caused by Fusarium spp. affect the harvest and for its </para>
      <para>control, synthetic fungicides are applied; nevertheless, natural products based </para>
      <para>on plant extracts may be an option for the sustainable management of this crop </para>
      <para>diseases. The objective of this research was to determine the in vitro and in vivo </para>
      <para>efciency of the Lippia palmeri extract for the control of Fusarium oxysporum </para>
      <para>and F. solani in chickpea seeds. To PDA media, 500, 1000 and 2000 ppm from </para>
      <para>ethanolic extract of L. palmeri plus one agar disc of each pathogen, and the </para>
      <para>inhibition of mycelial growth was quantied. Chickpea seeds were submerged in </para>
      <para>each concentration of L. palmeri for 5 and 10 min, later, each seed was inoculated </para>
      <para>with F. oxysporum and F. solani and the disease incidence and germinated </para>
      <para>seeds were determined. The three concentrations of L. palmeri inhibited both </para>
      <para>phytopathogens in vitro. In the seeds, L. palmeri ethanolic extract decreased the </para>
      <para>incidence of F. solani and kept germination above 80 %. For F.oxysporum only </para>
      <para>the highest dose of the ethanolic extract and the longest exposure time decreased </para>
      <para>the incidence by 20 % and germination was less than 25 %.The ethanolic extract </para>
      <para>of L. palmeri can be an option to decrease diseases caused by phytopathogenic </para>
      <para>fungus of the soil in chickpea seeds.</para>
      <para>Key words: antifungal, Fusarium solani, Fusarium oxysporum, germination.</para>
      <para>Resumo</para>
      <para>O grão-de-bico é uma cultura de importância global devido ao seu valor </para>
      <para>nutricional; no entanto, a cultura é afetada por doenças de sementes e raízes </para>
      <para>causadas por Fusarium spp. E são aplicados fungicidas sintéticos para controlá-</para>
      <para>lo, portanto, produtos naturais à base de nos extratos vegetais, podem ser uma </para>
      <para>opção para o manejo sustentável das doenças dessa cultura. O objetivo desta </para>
      <para>investigação foi determinar a eciência in vitro e in vivo do extrato etanólico de </para>
      <para>Lippia palmeri para o controle de Fusarium oxysporum e F. solani em sementes </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pf3">
      <para>370</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2020, 37: 368-386. Octubre-Diciembre.</para>
      <para>Romero-Bastidas et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>de grão de bico. Ao meio PDA, 500, 1000 e 2000 ppm do extrato etanólico de L. </para>
      <para>palmeri mais um disco de ágar de cada patógeno foram adicionados e a inibição </para>
      <para>do crescimento micelial foi medida. Sementes de grão-de-bico foram imersas em </para>
      <para>cada concentração de L. palmeri por cinco e 10 minutos e, posteriormente, cada </para>
      <para>semente foi inoculada com F. oxysporum e F. solani, determinando-se a incidência </para>
      <para>da doença e o número de sementes germinadas. As três concentrações de L. </para>
      <para>palmeri inibiram ambos os patógenos in vitro. Nas sementes, o extrato etanólico </para>
      <para>de L. palmeri diminuiu a incidência de F. solani e manteve a germinação acima de </para>
      <para>80 %. Para F. oxysporum, apenas a dose mais alta do extrato etanólico e o maior </para>
      <para>tempo de exposição diminuíram a incidência em 20 % e a germinação foi menor </para>
      <para>que 25 %. O extrato etanólico de L. palmeri pode ser uma opção para reduzir </para>
      <para>doenças causadas por fungos topatogênicos do solo em sementes de grão de bico</para>
      <para>Palavras-chave: antifúngicos, Fusarium solani, Fusarium oxysporum, </para>
      <para>germinação.</para>
      <para>Introducción</para>
      <para>La demanda constante de agro-</para>
      <para>productos libres de plaguicidas </para>
      <para>sintéticos ha obligado a implementar </para>
      <para>alternativas de producción, libres </para>
      <para>de residuos químicos dentro de los </para>
      <para>sistemas agrícolas (Sayuri et al., </para>
      <para>2018). Sin embargo, el control de </para>
      <para>hongos topatógenos sin el uso </para>
      <para>tradicional de plaguicidas sintéticos </para>
      <para>ha sido uno de los principales retos </para>
      <para>para el manejo sustentable de los </para>
      <para>cultivos. Actualmente, los productos </para>
      <para>naturales basados en extractos de </para>
      <para>plantas han generado un gran interés </para>
      <para>para el manejo de topatógenos, con </para>
      <para>la ventaja de que no presentan un </para>
      <para>impacto negativo al ambiente ni a </para>
      <para>la salud humana o animal (Shirazi </para>
      <para>et al., 2020). Entre los diferentes </para>
      <para>compuestos antifúngicos que </para>
      <para>contienen los extractos de plantas </para>
      <para>destacan los alcaloides, taninos, </para>
      <para>quinonas, cumarinas, compuestos </para>
      <para>fenólicos y toalexinas (Wangkhem et </para>
      <para>al., 2019), los cuales, han controlado </para>
      <para>Introduction</para>
      <para>The constant demand of agro-</para>
      <para>products free of synthetic pesticides </para>
      <para>has forced to implement production </para>
      <para>alternatives, free of chemical residues </para>
      <para>within agricultural systems (Sayuri </para>
      <para>et al., 2018). However, the control of </para>
      <para>phytopathogenic fungus without the </para>
      <para>traditional use of synthetic pesticides </para>
      <para>has been one of the main challenges </para>
      <para>for the sustainable management of </para>
      <para>crops. Nowadays, natural products </para>
      <para>based on plant extracts have </para>
      <para>generated a big interest for the </para>
      <para>management of phytopathogens, </para>
      <para>with the advantage that they do </para>
      <para>not have a negative impact on the </para>
      <para>environment or on human or animal </para>
      <para>health (Shirazi et al., 2020). Among </para>
      <para>the different antifungal compounds </para>
      <para>contained in plant extracts, there </para>
      <para>are: alkaloids, tannins, quinones, </para>
      <para>coumarins, phenolic compounds and </para>
      <para>phytoalexins (Wangkhem et al., 2019), </para>
      <para>which have controlled efciently to </para>
      <para>various phytopathogenic fungus </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pf4">
      <para>371</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2020, 37: 368-386. Octubre-Diciembre. </para>
      <para>Romero-Bastidas et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>de manera eciente a diversos hongos </para>
      <para>topatógenos como; Botrytis cinerea </para>
      <para>(Şesan et al., 2015), Colletotrichum </para>
      <para>spp. (Melo et al., 2016), Fusarium </para>
      <para>spp. (Wang et al., 2016), Phytophthora </para>
      <para>capsici (Tala et al., 2018), entre otros. </para>
      <para>El orégano (Lippia palmeri Wats) de </para>
      <para>la familia Verbenaceae, ha sido usado </para>
      <para>tradicionalmente en la medicina popular </para>
      <para>para disminuir problemas respiratorios, </para>
      <para>digestivos, dolores de cabeza, reumatismo, </para>
      <para>entre otros (Leyva-López et al., 2016). </para>
      <para>Además, se han estudiado sus propiedades </para>
      <para>farmacológicas (Gutiérrez-Grijalva et al., </para>
      <para>2019), antioxidantes (Gutiérrez‐Grijalva et </para>
      <para>al., 2019) y antimicrobianas (Ortega-Nieblas </para>
      <para>et al., 2011). De la gama de compuestos </para>
      <para>químicos que presenta L. palmeri, destacan </para>
      <para>el carvacrol, timol, eugenol y cimeno, </para>
      <para>debido a su alta acción antimicrobiana, </para>
      <para>causando principalmente disrupción de </para>
      <para>las membranas y paredes celulares de los </para>
      <para>microorganismos (Oyedemi et al., 2009; </para>
      <para>Tornuk et al., 2014). </para>
      <para>El extracto etanólico de L. palmeri </para>
      <para>ha sido eciente para el control de </para>
      <para>diversos patógenos de humanos como </para>
      <para>Escherichia coli y Staphylococcus </para>
      <para>aureus (Ortega-Nieblas et al., 2011) </para>
      <para>y topatógenos como </para>
      <para>&amp;ODYLEDFWHUmichiganensissubespecie </para>
      <para>michiganensis (Borboa-Flores et al., </para>
      <para>2010). Hasta ahora, según concierne </para>
      <para>a los autores de este trabajo, no </para>
      <para>existen reportes de su aplicación </para>
      <para>para el control de hongos de raíz, los </para>
      <para>cuales, son uno de los topatógenos </para>
      <para>más comunes y severos de diversos </para>
      <para>cultivos.</para>
      <para>El garbanzo (Cicer arietinum L.), </para>
      <para>es un cultivo que se destaca por su </para>
      <para>alto valor nutricional, sin embargo, la </para>
      <para>cosecha se ve disminuida por diversos </para>
      <para>such as; Botrytis cinerea (Şesan et </para>
      <para>al.,2015), Colletotrichum spp. (Melo </para>
      <para>et al.,2016), Fusarium spp. (Wang et </para>
      <para>al.,2016), Phytophthora capsici (Tala </para>
      <para>et al.,2018), among others. </para>
      <para>The oregano (Lippia palmeri Wats) </para>
      <para>of the Verbenaceae family, has been </para>
      <para>traditionally used in popular medicine </para>
      <para>to decrease respiratory and digestive </para>
      <para>problems, headaches, rheumatism, </para>
      <para>among others (Leyva-López et al., </para>
      <para>2016). In addition, its pharmacological </para>
      <para>(Gutiérrez-Grijalva et al., 2019), </para>
      <para>antioxidants (Gutiérrez-Grijalva et </para>
      <para>al., 2019) and antimicrobials (Ortega-</para>
      <para>Nieblas et al., 2011) properties have </para>
      <para>been studied. From the range of </para>
      <para>chemical compounds that L. palmeri </para>
      <para>presents, there are the carvacrol, </para>
      <para>thymol, eugenol and cymene, due to </para>
      <para>its high antimicrobial action, mainly </para>
      <para>causing disruption of the membranes </para>
      <para>and cell walls of microorganisms </para>
      <para>(Oyedemi et al., 2009; Tornuk et al., </para>
      <para>2014).</para>
      <para>The ethanolic extract of L. </para>
      <para>palmeri has been efcient for the </para>
      <para>control of various human pathogens </para>
      <para>such as Escherichiacoli and </para>
      <para>Staphylococcus aureus (Ortega-Nieblas </para>
      <para>et al., 2011) and phytopathogens </para>
      <para>such as Clavibacter michiganensis </para>
      <para>subspecie michiganensis (Borboa-</para>
      <para>Flores et al., 2010). Until now, </para>
      <para>according to the authors of this work, </para>
      <para>there are no reports of its application </para>
      <para>for the control of root fungus, which </para>
      <para>are one of the most common and severe </para>
      <para>phytopathogens of various crops.</para>
      <para>The chickpea (Cicer arietinum L.), </para>
      <para>is a crop that stands out for its high </para>
      <para>nutritional value, however, the harvest </para>
      <para>is diminished by various factors, </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pf5">
      <para>372</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2020, 37: 368-386. Octubre-Diciembre.</para>
      <para>Romero-Bastidas et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>factores, destacando las enfermedades </para>
      <para>ocasionadas por diversos hongos </para>
      <para>topatógenos (Sankar et al., 2019). </para>
      <para>Fusarium oxysporum y F. solani son </para>
      <para>dos hongos que causan enfermedades </para>
      <para>en semillas y raíz de plantas de </para>
      <para>garbanzo y están considerados como </para>
      <para>topatógenos de importancia debido a </para>
      <para>su amplia distribución mundial y a las </para>
      <para>pérdidas que producen anualmente, </para>
      <para>dentro de los principales síntomas </para>
      <para>que ocasionan están las pudriciones </para>
      <para>y/o necrosis en la semilla o pudrición </para>
      <para>y/o necrosis de raíz y marchitamiento </para>
      <para>general que provocan la muerte de las </para>
      <para>plantas en vivero o campo (Sunkad et </para>
      <para>al., 2019). </para>
      <para>En México, la variedad de </para>
      <para>garbanzo Blanco Sinaloa genera </para>
      <para>un grano con mayor demanda del </para>
      <para>mercado internacional, no obstante, </para>
      <para>ha mostrado susceptibilidad a las </para>
      <para>enfermedades de raíz (Frac et al., </para>
      <para>2016), por lo que el uso del extracto </para>
      <para>etanólico de L. palmeri pudiera ser </para>
      <para>una alternativa para el control de </para>
      <para>hongos topatógenos en esta especie. </para>
      <para>El objetivo del presente estudio fue </para>
      <para>evaluar la eciencia in vitro e in vivo </para>
      <para>del extracto etanólico de L. palmeri </para>
      <para>para el control de F. oxysporum y F. </para>
      <para>solani en semillas de garbanzo.</para>
      <para>Materiales y métodos</para>
      <para>Obtención de la semilla</para>
      <para>Se utilizaron semillas de garbanzo </para>
      <para>de la variedad Blanco Sinaloa (INIFAP, </para>
      <para>Ortega-Murrieta et al., 2016), donada </para>
      <para>por productores de la región agrícola </para>
      <para>“Valle de Santo Domingo” ubicada en </para>
      <para>Ciudad Constitución, Baja California </para>
      <para>Sur, México (25°01′56″ N, 111°40′13″ O). </para>
      <para>highlighting the diseases caused by </para>
      <para>various phytopathogenic fungus </para>
      <para>(Sankar et al., 2019). F. </para>
      <para>oxysporum and F. Solani are two </para>
      <para>fungus that cause diseases in seeds </para>
      <para>and roots of chickpea plants and they </para>
      <para>are considered phytopathogens of </para>
      <para>importance due to their wide global </para>
      <para>distribution and the losses that they </para>
      <para>produce annually, among the main </para>
      <para>symptoms that they cause there are </para>
      <para>rots and / or necrosis in the seed or </para>
      <para>rot and / or root necrosis and general </para>
      <para>withering that causes the death </para>
      <para>of plants in seedling center or eld </para>
      <para>(Sunkad et al., 2019). </para>
      <para>In Mexico, the Blanco Sinaloa </para>
      <para>chickpea variety generates a </para>
      <para>grain with higher demand in the </para>
      <para>international market, however, it </para>
      <para>has shown susceptibility to root </para>
      <para>diseases (Frac et al., 2016), so the </para>
      <para>use of L. palmeri ethanolic extract </para>
      <para>could be an alternative for the control </para>
      <para>of phytopathogenic fungus in this </para>
      <para>specie.</para>
      <para>The objective of the present research </para>
      <para>was to evaluate the in vitro and in </para>
      <para>vivo efciency of L. palmeri ethanolic </para>
      <para>extract for the control of F. oxysporum </para>
      <para>and F. solani in chickpea seeds.</para>
      <para>Materials and methods</para>
      <para>Seeds collection</para>
      <para>Chickpea seeds of Blanco Sinaloa </para>
      <para>variety were used (INIFAP, Ortega-</para>
      <para>Murrieta et al., 2016), donated </para>
      <para>by producers from the “Valle de </para>
      <para>Santo Domingo” agricultural region </para>
      <para>located in Ciudad Constitución, Baja </para>
      <para>California Sur, Mexico (25° 01′56″ N, </para>
      <para>111°40′13″ O).</para>
    </sect2>
    <sect2 id="pf6">
      <para>373</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2020, 37: 368-386. Octubre-Diciembre. </para>
      <para>Romero-Bastidas et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>Hongos topatógenos</para>
      <para>Los aislamientos de F. oxysporum </para>
      <para>y F. solani fueron suministrados </para>
      <para>por el Laboratorio de Fitopatología </para>
      <para>del Departamento Académico de </para>
      <para>Agronomía, Universidad Autónoma de </para>
      <para>Baja California Sur. F. oxysporum y F. </para>
      <para>solani, fueron reactivados en placas </para>
      <para>Petri con el medio de cultivo papa-</para>
      <para>dextrosa-agar (PDA) y se incubaron a </para>
      <para>28 °C por siete días. </para>
      <para>Prueba de patogenicidad</para>
      <para>Para determinar la patogenicidad </para>
      <para>de F. oxysporum y F. solani se </para>
      <para>utilizaron semillas de garbanzo </para>
      <para>previamente esterilizadas con una </para>
      <para>solución de NaClO al 1 % </para>
      <para>m</para>
      <para>/</para>
      <para>v</para>
      <para>durante </para>
      <para>dos min, posteriormente, se lavaron </para>
      <para>con agua destilada estéril y se dejaron </para>
      <para>secar por 30 min. La concentración </para>
      <para>de cada topatógeno se ajustó a 1 </para>
      <para>× 10</para>
      <para>4</para>
      <para>esporas.mL</para>
      <para>-1</para>
      <para>utilizando un </para>
      <para>hematocitómetro y cada semilla fue </para>
      <para>inoculada con 20 µL de cada una </para>
      <para>de las suspensiones conidiales de </para>
      <para>F. oxysporum y F. solani. Se utilizó </para>
      <para>un lote de semillas sin topatógeno </para>
      <para>como grupo control. Las semillas se </para>
      <para>incubaron en una cámara ambiental </para>
      <para>a 28 ± 2 °C y 12 h de luz/oscuridad </para>
      <para>por siete días. La incidencia de la </para>
      <para>enfermedad (%) fue determinada en </para>
      <para>semillas con presencia de micelio y </para>
      <para>síntomas de pudriciones ocasionadas </para>
      <para>por los hongos, los cuales, fueron re-</para>
      <para>aislados en PDA para comprobar los </para>
      <para>postulados de Koch. Se utilizaron </para>
      <para>30 semillas por tratamiento y el </para>
      <para>experimento fue realizado dos veces.</para>
      <para>Material vegetal y preparación de </para>
      <para>extractos etanólicos de L. palmeri</para>
      <para>Se colectaron plantas silvestres </para>
      <para>de Lippia palmeri en La Paz, Baja </para>
      <para>Phytopathogenic fungus</para>
      <para>The isolations of F. oxysporum </para>
      <para>and F. Solani were provided by </para>
      <para>the Laboratorio de Fitopatología </para>
      <para>del Departamento Académico de </para>
      <para>Agronomía, Universidad Autónoma </para>
      <para>de Baja California Sur. F. oxysporum </para>
      <para>and F. solani, were reactivated in Petri </para>
      <para>dishes with the potato-dextrose-agar </para>
      <para>(PDA) culture media and incubated at </para>
      <para>28° C for seven days.</para>
      <para>Pathogenicity test</para>
      <para>To determine the pathogenicity of </para>
      <para>F. oxysporum and F. solani, chickpea </para>
      <para>seeds previously sterilized with a </para>
      <para>solution of NaClO at 1 % </para>
      <para>m</para>
      <para>/</para>
      <para>v</para>
      <para>during 2 </para>
      <para>min were used, later, they were washed </para>
      <para>with sterile distilled water and left to </para>
      <para>dry for 30 min. The concentration of </para>
      <para>each phytopathogen was adjusted </para>
      <para>to 1 × 10</para>
      <para>4</para>
      <para>spores. mL</para>
      <para>-1</para>
      <para>using a </para>
      <para>hematocytometer and each seed was </para>
      <para>inoculated with 20 µL of each of the </para>
      <para>F. oxysporum and F. solani conidial </para>
      <para>suspensions. A batch of seeds without </para>
      <para>phytopathogen was used as a control </para>
      <para>group. The seeds were incubated in an </para>
      <para>environmental chamber at 28 ± 2 °C </para>
      <para>and 12 h of light/darkness for seven </para>
      <para>days. The incidence of the disease </para>
      <para>(%) was determined in seeds with the </para>
      <para>presence of mycelium and symptoms </para>
      <para>of rot caused by fungus, which were </para>
      <para>re-isolated in PDA to verify Koch’s </para>
      <para>postulates. Thirty seeds were used per </para>
      <para>treatment and the experiment was </para>
      <para>carried out twice.</para>
      <para>Plant material and preparation of </para>
      <para>L. palmeri ethanolic extracts</para>
      <para>Wild plants were collected from </para>
      <para>Lippia palmeri in La Paz, Baja </para>
      <para>California Sur, Mexico (24°08′32 ″ N, </para>
      <para>110°18′39 ″ W). </para>
      <para>To obtain the ethanolic </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pf7">
      <para>374</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2020, 37: 368-386. Octubre-Diciembre.</para>
      <para>Romero-Bastidas et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>California Sur, México (24°08′32″ N, </para>
      <para>110°18′39″ O). Para obtener el extracto </para>
      <para>etanólico (EE), las plantas se secaron a </para>
      <para>temperatura ambiente (25 ± 2 °C) por </para>
      <para>siete días. Posteriormente, el material </para>
      <para>seco se trituró y se depositaron 300 </para>
      <para>g en recipientes de vidrio de 1 L, </para>
      <para>conteniendo 900 mL de etanol al 96 </para>
      <para>% </para>
      <para>v</para>
      <para>/</para>
      <para>v</para>
      <para>. Los recipientes fueron sellados </para>
      <para>y almacenados por siete días a 25 °C </para>
      <para>en completa oscuridad. El macerado </para>
      <para>en etanol fue ltrado a través de papel </para>
      <para>de ltro Wathman No. 4 y el etanol fue </para>
      <para>evaporado en un evaporador rotativo </para>
      <para>(Buchi B-480) a 40 °C, hasta sequedad </para>
      <para>completa. El extracto etanólico de L. </para>
      <para>palmeri se mantuvo a temperatura de </para>
      <para>-4 °C, hasta su uso.</para>
      <para>Evaluación in vitro de la actividad </para>
      <para>antifúngica del extracto etanólico de </para>
      <para>L. palmeri</para>
      <para>El efecto del extracto etanólico </para>
      <para>de L. palmeri sobre la inhibición del </para>
      <para>crecimiento micelial de F. oxysporum </para>
      <para>y F. solani fue evaluado mediante el </para>
      <para>método de difusión en agar propuesto </para>
      <para>por Soylu et al. (2007). El volumen de </para>
      <para>PDA necesario para dispensar 15 mL/placa</para>
      <para>Petri fue preparado y esterilizado, </para>
      <para>una vez alcanzada la temperatura </para>
      <para>de 40 °C, se le agregó el volumen del </para>
      <para>extracto etanólico necesario para </para>
      <para>obtener las concentraciones de 500, </para>
      <para>1000 y 2000 ppm, posteriormente, </para>
      <para>se colocó en el centro de las placas </para>
      <para>un disco de 0,5 cm de diámetro </para>
      <para>proveniente de un cultivo en PDA </para>
      <para>de siete días de cada topatógeno. </para>
      <para>Un grupo de placas con PDA fueron </para>
      <para>mezcladas con el fungicida sintético </para>
      <para>Captan (1 % N-triclorometiltio-4-</para>
      <para>ciclohexano-1,2-dicarboximida) a una </para>
      <para>dosis de 0,2 mg.mL</para>
      <para>-1</para>
      <para>e inoculadas </para>
      <para>extract (EE), the plants were dried </para>
      <para>at room temperature (25 ± 2 °C) for </para>
      <para>seven days. After, the dry material </para>
      <para>was crushed and 300 g were deposited </para>
      <para>in 1 L glass containers, containing 900 </para>
      <para>mL of 96 % </para>
      <para>v</para>
      <para>/</para>
      <para>v</para>
      <para>ethanol. The containers </para>
      <para>were sealed and stored for seven days </para>
      <para>at 25 ° C in complete darkness. The </para>
      <para>macerated in ethanol was ltered </para>
      <para>through Wathman No.4 lter paper </para>
      <para>and the ethanol was evaporated on </para>
      <para>a rotary evaporator (Buchi B-480) at </para>
      <para>40 °C, until complete dryness. The </para>
      <para>ethanolic extract of L. palmeri was </para>
      <para>kept at a temperature of -4 °C, until </para>
      <para>its use.</para>
      <para>In vitro evaluation of the antifungal </para>
      <para>activity of L. palmeri ethanolic extract </para>
      <para>The effect of L. palmeri ethanolic </para>
      <para>extract on the inhibition of mycelial </para>
      <para>growth of F. oxysporum and F. solani </para>
      <para>was evaluated using the diffusion </para>
      <para>method in agar proposed by Soylu </para>
      <para>et al. (2007). The volume of PDA </para>
      <para>necessary to dispense 15 mL/Petri </para>
      <para>dish was prepared and sterilized, once </para>
      <para>the temperature of 40 °C was reach, </para>
      <para>the volume of the ethanolic extract </para>
      <para>necessary to obtain the concentrations </para>
      <para>of 500, 1000 and 2000 ppm was added, </para>
      <para>later, in the center of the plates a 0.5 </para>
      <para>cm diameter disc from the culture in </para>
      <para>PDA of each pathogen was placed. </para>
      <para>A group of plates with PDA were </para>
      <para>mixed with the Captan synthetic </para>
      <para>fungicide (1 % N-trichloromethylthio-</para>
      <para>4-cyclohexane-1.2 -dicarboximide) at </para>
      <para>a dose of 0.2 mg.mL</para>
      <para>-1</para>
      <para>and inoculated </para>
      <para>with each phytopathogen. As control </para>
      <para>treatment, PDA with ethanol at </para>
      <para>96 % </para>
      <para>v</para>
      <para>/</para>
      <para>v</para>
      <para>and phytopathogen were </para>
      <para>mixed. The plates were incubated at </para>
      <para>28 °C for 10 days. Ten replicates per </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pf8">
      <para>375</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2020, 37: 368-386. Octubre-Diciembre. </para>
      <para>Romero-Bastidas et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>con cada topatógeno. Como </para>
      <para>tratamiento control se mezcló PDA </para>
      <para>con etanol al 96 % </para>
      <para>v</para>
      <para>/</para>
      <para>v</para>
      <para>y topatógeno. </para>
      <para>Las placas fueron incubadas a 28 </para>
      <para>ºC por 10 días. Se utilizaron diez </para>
      <para>réplicas por tratamiento. Al nal del </para>
      <para>experimento, se midió el diámetro </para>
      <para>(mm) del crecimiento radial de cada </para>
      <para>topatógeno y se expresó en porcentaje </para>
      <para>(%) de inhibición mediante la fórmula </para>
      <para>propuesta por Daryaei et al. (2016):</para>
      <para>IM (%) = 100 × (C – R)/C</para>
      <para>Dónde: </para>
      <para>IM: Inhibición radial del </para>
      <para>topatógeno en porcentaje</para>
      <para>C = Diámetro de la colonia del </para>
      <para>tratamiento control</para>
      <para>R = Diámetro de la colonia del </para>
      <para>topatógeno de cada tratamiento</para>
      <para>Efecto del extracto etanólico de </para>
      <para>L. palmeri sobre la germinación y la </para>
      <para>pudrición de las semillas de garbanzo </para>
      <para>causada por F. oxysporum y F. solani</para>
      <para>Se utilizaron semillas de garbanzo </para>
      <para>previamente esterilizadas con una de </para>
      <para>solución de NaClO al 1 % </para>
      <para>m</para>
      <para>/</para>
      <para>v</para>
      <para>por dos </para>
      <para>min, posteriormente, se lavaron con </para>
      <para>agua destilada estéril y se dejaron secar </para>
      <para>por 30 min. Lotes de semillas fueron </para>
      <para>embebidos en tres concentraciones </para>
      <para>(500, 1000 y 2000 ppm) del extracto </para>
      <para>etanólico de L. palmeri por cinco y </para>
      <para>10 min. Seguidamente, cada semilla </para>
      <para>fue inoculada con 20 µL de cada </para>
      <para>suspensión conidial (previamente </para>
      <para>ajustada a 1 × 10</para>
      <para>4</para>
      <para>esporas.mL</para>
      <para>-1</para>
      <para>) de </para>
      <para>F. oxysporum y F. solani. Lotes de </para>
      <para>semillas fueron inoculados con cada </para>
      <para>topatógeno y el fungicida sintético </para>
      <para>Captan (1 % de N-triclorometiltio-4-</para>
      <para>ciclohexano-1,2-dicarboximida) a una </para>
      <para>treatment were used. At the end of the </para>
      <para>experiment, the diameter (mm) of the </para>
      <para>radial growth of each phytopathogen </para>
      <para>was measured and it was expressed </para>
      <para>as a percentage (%) of inhibition by </para>
      <para>the formula proposed by Daryaei et al. </para>
      <para>(2016):</para>
      <para>IM (%) = 100 × (C – R)/C</para>
      <para>Where:</para>
      <para>IM: Radial inhibition of the </para>
      <para>phytopathogen in percentage </para>
      <para>C = Diameter of the colony of the </para>
      <para>control treatment</para>
      <para>R = Diameter of the phytopathogen </para>
      <para>colony of each treatment</para>
      <para>Effect of the ethanolic extract of </para>
      <para>L. palmeri on germination and rot of </para>
      <para>chickpea seeds caused by F. oxysporum </para>
      <para>and F. solani</para>
      <para>Chickpea seeds previously </para>
      <para>sterilized with a solution of NaClO at </para>
      <para>1% </para>
      <para>m</para>
      <para>/</para>
      <para>v</para>
      <para>for 2 min were used, after, they </para>
      <para>were washed with sterile distilled </para>
      <para>water and they were left to dry for 30 </para>
      <para>min. Seed lots were submerged in three </para>
      <para>concentrations (500, 1000 and 2000 </para>
      <para>ppm) of L. palmeri ethanolic extract </para>
      <para>for 5 and 10 min. Then, each seed was </para>
      <para>inoculated with 20 µL of each conidial </para>
      <para>suspension (previously adjusted to 1 × </para>
      <para>104 spores. mL</para>
      <para>-1</para>
      <para>) of F. oxysporum and </para>
      <para>F. solani. Seed lots were inoculated </para>
      <para>with each phytopathogen and the </para>
      <para>Captan synthetic fungicide (1 % </para>
      <para>N-trichloromethylthio-4-cyclohexane-</para>
      <para>1.2-dicarboximide) at a dose of 0.2 </para>
      <para>mg.mL</para>
      <para>-1</para>
      <para>, another with ethanol at 96 % </para>
      <para>v</para>
      <para>/</para>
      <para>v</para>
      <para>and one more with sterile distilled </para>
      <para>water (ADE). A batch of seeds without </para>
      <para>fungus was considered as a control. </para>
      <para>The seeds were incubated in an </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pf9">
      <para>376</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2020, 37: 368-386. Octubre-Diciembre.</para>
      <para>Romero-Bastidas et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>dosis de 0,2 mg.mL</para>
      <para>-1</para>
      <para>, otro con etanol al </para>
      <para>96 % </para>
      <para>v</para>
      <para>/</para>
      <para>v</para>
      <para>y uno más con agua destilada </para>
      <para>estéril (ADE). Un lote de semillas </para>
      <para>sin hongos fue considerado como </para>
      <para>control. Las semillas se incubaron en </para>
      <para>una cámara ambiental a 28 ± 2 °C y </para>
      <para>12 h de luz/oscuridad por siete (7) </para>
      <para>días. Se determinó el porcentaje de </para>
      <para>la incidencia de la enfermedad y el </para>
      <para>porcentaje de semillas germinadas. Se </para>
      <para>utilizaron 30 semillas por tratamiento </para>
      <para>y el experimento fue realizado dos </para>
      <para>veces.</para>
      <para>Diseño experimental y análisis </para>
      <para>estadístico</para>
      <para>Se empleó un diseño experimental </para>
      <para>completamente al azar y los datos </para>
      <para>fueron procesados por un análisis </para>
      <para>de varianza (ANOVA) de una vía. </para>
      <para>Se utilizó el paquete estadístico </para>
      <para>Statistica® v. 10,0 para Windows </para>
      <para>(StatSoft) y para la comparación </para>
      <para>de medias se utilizó la prueba de </para>
      <para>Tukey (p&lt;0,05). Los porcentajes se </para>
      <para>transformaron con raíz cuadrada de </para>
      <para>arcoseno.</para>
      <para>Resultados y discusión </para>
      <para>Patogenicidad de F. oxysporum y </para>
      <para>F. solani</para>
      <para>Ambos hongos tuvieron una </para>
      <para>incidencia del 100 % sobre las semillas </para>
      <para>de garbanzo. A las 24 h después </para>
      <para>de inoculado F. solani, se observó </para>
      <para>sobre las semillas de garbanzo un </para>
      <para>crecimiento micelial de color blanco a </para>
      <para>beige, con textura afelpada o esponjosa </para>
      <para>y a los tres (3) días la radícula mostró </para>
      <para>síntomas asociados a clorosis de </para>
      <para>tejido, acidez y pudrición de la parte </para>
      <para>apical. En el caso de F. oxysporum, </para>
      <para>a las 24 h las semillas presentaron </para>
      <para>environmental chamber at 28 ± 2°C </para>
      <para>and 12 h of light/darkness for seven (7) </para>
      <para>days. The percentage of the incidence </para>
      <para>of the disease and the percentage of </para>
      <para>germinated seeds were determined. </para>
      <para>Thirty seeds per treatment were used </para>
      <para>and the experiment was carried out </para>
      <para>twice.</para>
      <para>Experimental design and </para>
      <para>statistical analysis</para>
      <para>A completely randomized </para>
      <para>experimental design was used and </para>
      <para>the data were processed by a one-way </para>
      <para>analysis of variance (ANOVA). The </para>
      <para>Statistica® v. 10.0 statistical package </para>
      <para>was used for Windows (StatSoft) and </para>
      <para>Tukey’s test (p&lt;0.05) was used for the </para>
      <para>comparison of means. The percentages </para>
      <para>were transformed with arcsine square </para>
      <para>root.</para>
      <para>Results and discussion</para>
      <para>Pathogenicity of F. oxysporum and </para>
      <para>F. solani</para>
      <para>Both fungus had an incidence </para>
      <para>of 100 % on chickpea seeds. At 24 h </para>
      <para>after inoculating F. solani, a white </para>
      <para>to beige mycelial growth with spongy </para>
      <para>texture was observed on the chickpea </para>
      <para>seeds and at day three (3) the radicle </para>
      <para>showed symptoms associated with </para>
      <para>tissue chlorosis, accidity and rot </para>
      <para>of the apical part. In the case of F. </para>
      <para>oxysporum, at 24 h the seeds presented </para>
      <para>plush mycelial growth of white to </para>
      <para>purple coloration and at day ve (5) </para>
      <para>the radicle presented symptoms of </para>
      <para>tissue chlorosis. Re-isolation of both </para>
      <para>phytopathogens of chickpea seeds </para>
      <para>veried Koch’s postulates.</para>
      <para>Chickpea is a crop affected by more </para>
      <para>than 50 phytopathogens around the </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pfa">
      <para>377</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2020, 37: 368-386. Octubre-Diciembre. </para>
      <para>Romero-Bastidas et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>crecimiento micelial afelpado de </para>
      <para>coloración blanco a purpura y a los </para>
      <para>cinco (5) días la radícula presentó </para>
      <para>síntomas de clorosis de tejido. El re-</para>
      <para>aislamiento de ambos topatógenos </para>
      <para>de las semillas de garbanzo comprobó </para>
      <para>los postulados de Koch.</para>
      <para>El garbanzo, es un cultivo </para>
      <para>afectado por más de 50 topatógenos </para>
      <para>alrededor del mundo (Nene et al., </para>
      <para>1996; Sankar et al., 2018). Los hongos </para>
      <para>topatógenos, constituyen uno de los </para>
      <para>grupos de mayor importancia debido </para>
      <para>a las pérdidas que ocasionan en los </para>
      <para>cultivos. F. solani y F. oxysporum </para>
      <para>son dos topatógenos del suelo que </para>
      <para>afectan al garbanzo, ocasionando </para>
      <para>desde pudrición de semilla hasta </para>
      <para>la muerte de la planta, originando </para>
      <para>pérdidas económicas en todo el ciclo </para>
      <para>del cultivo (El Hazzat et al., 2019; </para>
      <para>Tlemsani et al., 2020). Además, el </para>
      <para>género Fusarium es considerado </para>
      <para>uno de los estresores bióticos para </para>
      <para>las plantas más importantes que </para>
      <para>presentan resistencia a los fungicidas </para>
      <para>sintéticos, complicando su control </para>
      <para>(Oliva-Ortiz et al., 2017). Por lo </para>
      <para>tanto, la búsqueda de alternativas </para>
      <para>para disminuir enfermedades en </para>
      <para>las plantas ocasionadas por hongos </para>
      <para>topatógenos es una prioridad a nivel </para>
      <para>mundial (Shuping y Eloff, 2017). </para>
      <para>Efecto del extracto etanólico de L. </para>
      <para>palmeri sobre el crecimiento micelial </para>
      <para>de F. oxysporum y F. solani</para>
      <para>Las tres concentraciones (500 ppm, </para>
      <para>1000 ppm y 2000 ppm) del extracto </para>
      <para>etanólico de L. palmeri inhibieron </para>
      <para>signicativamente el crecimiento </para>
      <para>radial de F. solani y F. oxysporum en </para>
      <para>comparación al tratamiento control </para>
      <para>(gura 1). </para>
      <para>world (Nene et al., 1996; Sankar et al., </para>
      <para>2018). The phytopathogenic fungus </para>
      <para>are one of the most important groups </para>
      <para>due to the losses they cause in crops. </para>
      <para>F. solani and F. oxysporum are two soil </para>
      <para>phytopathogens that affect chickpea, </para>
      <para>producing from seed rot to death of </para>
      <para>the plant, causing economic losses </para>
      <para>throughout the crop cycle (El Hazzat et </para>
      <para>al., 2019; Tlemsani et al., 2020). Also, </para>
      <para>the genus Fusarium is considered </para>
      <para>one of the biotic stressors for the </para>
      <para>most important plants that present </para>
      <para>resistance to synthetic fungicides, </para>
      <para>complicating their control (Oliva-Ortiz </para>
      <para>et al., 2017). Therefore, the search for </para>
      <para>alternatives to reduce plant diseases </para>
      <para>caused by phytopathogenic fungus </para>
      <para>is a worldwide priority (Shuping and </para>
      <para>Eloff, 2017).</para>
      <para>Effect of L. palmeri ethanolic </para>
      <para>extract on the mycelial growth of </para>
      <para>F oxysporum and F. solani</para>
      <para>The three concentrations (500 </para>
      <para>ppm, 1000 ppm, and 2000 ppm) of L. </para>
      <para>palmeri ethanolic extract signicantly </para>
      <para>inhibited the radial growth of F. solani </para>
      <para>and F. oxysporum in comparison to </para>
      <para>the control treatment (gure 1).</para>
      <para>In the case of F. oxysporum, the </para>
      <para>concentration of 2000 ppm of L. </para>
      <para>palmeri ethanolic extract, inhibited </para>
      <para>the phytopathogen by 100 % and for </para>
      <para>the case of F. solani, the concentrations </para>
      <para>of 1000 and 2000 ppm of this Fabaceae </para>
      <para>inhibited it by 100 %. With the Captan </para>
      <para>synthetic fungicide the inhibition of F. </para>
      <para>oxysporum was 79 % and for F. solani </para>
      <para>was 100%. The control (ethanol) </para>
      <para>had no inhibition effects on both </para>
      <para>phytopathogens (gure 2).</para>
      <para>Plant extracts have a broad </para>
      <para>antimicrobial activity towards various </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pfb">
      <para>
        <inlinegraphic fileref="embedded:Image2" width="3.5626inch" depth="2.3264inch"/>
      </para>
      <para>378</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2020, 37: 368-386. Octubre-Diciembre.</para>
      <para>Romero-Bastidas et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>En el caso de F. oxysporum, la </para>
      <para>concentración de 2000 ppm del </para>
      <para>extracto etanólico de L. palmeri, </para>
      <para>inhibió al topatógeno en un 100 </para>
      <para>% y para el caso de F. solani, las </para>
      <para>concentraciones de 1000 y 2000 </para>
      <para>ppm de esta Fabaceae, lo inhibieron </para>
      <para>un 100 %. Con el fungicida </para>
      <para>sintético Captan la inhibición de F. </para>
      <para>oxysporum fue del 79 % y para F. </para>
      <para>solani del 100 %. El control (etanol) </para>
      <para>no tuvo efectos de inhibición sobre </para>
      <para>ambos topatógenos (gura 2). </para>
      <para>Los extractos de plantas </para>
      <para>tienen una amplia actividad </para>
      <para>antimicrobiana hacia diversos </para>
      <para>topatógenos debido al contenido </para>
      <para>de sustancias activas como </para>
      <para>toalexinas y toantocianinas que </para>
      <para>contienen alcaloides, avónidos, </para>
      <para>terpenoides, fenoles, glucósidos, </para>
      <para>taninos y / o ácidos grasos (Andrade-</para>
      <para>Bustamante et al., 2018). </para>
      <para>Figura 1. Efecto in vitro del extracto etanólico de Lippia palmeri sobre la inhibición micelial </para>
      <para>de F. solani y F. oxysporum. Columnas con letras diferentes indican diferencias </para>
      <para>signicativas de acuerdo a la prueba de Tukey (p&lt; 0,05). </para>
      <para>Figure 1. In vitro effect of ethanolic extract of Lippia palmeri extract on the mycelial inhibition </para>
      <para>of F. solani and F. oxysporum. Columns with different letters indicate signicant </para>
      <para>differences according to the Tukey test (p&lt; 0.05).</para>
      <para>phytopathogens due to the content of </para>
      <para>active substances such as phytoalexins </para>
      <para>and phytoanthocyanins that contain </para>
      <para>alkaloids, avonides, terpenoids, </para>
      <para>phenols, glycosides, tannins and / or </para>
      <para>fatty acids (Andrade-Bustamante et </para>
      <para>al., 2018).</para>
      <para>The ethanolic extract of L. palmeri </para>
      <para>inhibited F. solani and F. oxysporum </para>
      <para>in vitro and in vivo, which could be </para>
      <para>mainly due to the content of aromatic </para>
      <para>monoterpenes such as carvacrol </para>
      <para>and thymol, and to alkylbenzenep-</para>
      <para>cymene, which have been reported as </para>
      <para>important antifungals. (Wang et al., </para>
      <para>2018).</para>
      <para>Various studies show that these </para>
      <para>monoterpenes inhibit phytopathogenic </para>
      <para>fungus mainly due to the damage </para>
      <para>they cause to their membrane structure, </para>
      <para>inhibition of biosynthesis and nucleic </para>
      <para>acids function, interference of essential </para>
      <para>metabolic processes, induction of </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pfc">
      <para>
        <inlinegraphic fileref="embedded:Image3" width="2.7709inch" depth="2.0972inch"/>
      </para>
      <para>379</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2020, 37: 368-386. Octubre-Diciembre. </para>
      <para>Romero-Bastidas et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>El extracto etanólico de L. palmeri </para>
      <para>inhibió in vitro e in vivo a F. solani </para>
      <para>y F. oxysporum, lo cual pudiera </para>
      <para>deberse principalmente al contenido </para>
      <para>de monoterpenos aromáticos como el </para>
      <para>carvacrol y timol, y al alquibenceno </para>
      <para>p-cimeno, los cuales, han sido reportados </para>
      <para>como importantes antifúngicos (Wang et </para>
      <para>al., 2018). </para>
      <para>Diversos estudios demuestran que </para>
      <para>estos monoterpenos inhiben a los hongos </para>
      <para>topatógenos principalmente por el daño </para>
      <para>que ocasionan en la estructura de su </para>
      <para>membrana, inhibición de la biosíntesis </para>
      <para>y función de los ácidos nucleicos, </para>
      <para>interferencia de procesos metabólicos </para>
      <para>esenciales, inducción de la coagulación </para>
      <para>de los componentes citoplásmicos y </para>
      <para>la interrupción en la comunicación </para>
      <para>celular normal (Radulovic et al., 2013), </para>
      <para>inhibición de la fosforilación oxidativa de </para>
      <para>la membrana celular y de enzimas como </para>
      <para>la celulasa, pectinasa, lacasa, xilanasa, </para>
      <para>entre otras, causando una limitación en </para>
      <para>Figura 2. Efecto in vitro de tres concentraciones del extracto etanólico de Lippia palmeri sobre el </para>
      <para>crecimiento micelial de F. oxysporum y F. solani. Fungicida = Captan (0,2 mg.mL</para>
      <para>-1</para>
      <para>). </para>
      <para>Control = etanol al 96 % </para>
      <para>v</para>
      <para>/v. </para>
      <para>Figure 2. In vitro effect of three concentrations of ethanolic extract of Lippia palmeri on the </para>
      <para>mycelial growth of F. oxysporum and F. solani . Synthetic fungicide = Captan (0.2 mg.mL</para>
      <para>-1</para>
      <para>)</para>
      <para>Control = 96 % ethanol </para>
      <para>v</para>
      <para>/v.</para>
      <para>coagulation of cytoplasmic components </para>
      <para>and interruption in normal cellular </para>
      <para>communication (Radulovic et al., 2013), </para>
      <para>inhibition of oxidative phosphorylation of </para>
      <para>the cell membrane and of enzymes such </para>
      <para>as cellulase, pectinase, laccase, xylanase, </para>
      <para>among others, causing a limitation in the </para>
      <para>absorption of nutrients (complexation of </para>
      <para>metals and insolubilization of proteins) </para>
      <para>for the fungus (Lattanzio et al., 2006; </para>
      <para>Morales et al., 2017).</para>
      <para>Effect of L. palmeri ethanolic </para>
      <para>extract on germination and rot of </para>
      <para>chickpea seeds caused by F. solani </para>
      <para>and F. oxysporum</para>
      <para>The different doses of L. palmeri</para>
      <para>ethanolic extract signicantly </para>
      <para>decreased the incidence of F. solani </para>
      <para>and they kept germination of chickpea </para>
      <para>seeds over 80 % (gure 3).</para>
      <para>The application of 2000 ppm of </para>
      <para>L. </para>
      <para>palmeri ethanolic extract for 5 and 10 </para>
      <para>min in the seeds, signicantly reduced </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pfd">
      <para>
        <inlinegraphic fileref="embedded:Image4" width="3.3957inch" depth="3.4791inch"/>
      </para>
      <para>380</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2020, 37: 368-386. Octubre-Diciembre.</para>
      <para>Romero-Bastidas et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>la absorción de nutrientes (complejación </para>
      <para>de metales e insolubilización de </para>
      <para>proteínas) para el hongo (Lattanzio et </para>
      <para>al., 2006; Morales et al., 2017). </para>
      <para>Efecto del extracto etanólico de </para>
      <para>L. palmeri sobre la germinación y la </para>
      <para>pudrición de las semillas de garbanzo </para>
      <para>causada por F. solani y F. oxysporum</para>
      <para>Las distintas dosis del extracto </para>
      <para>etanólico de L. palmeri disminuyeron </para>
      <para>signicativamente la incidencia del F. </para>
      <para>solani y mantuvieron sobre el 80 % la </para>
      <para>germinación de las semillas de garbanzo </para>
      <para>(gura 3). </para>
      <para>the incidence of the phytopathogen </para>
      <para>by less than 26 %, surpassing the </para>
      <para>treatment with Captan synthetic </para>
      <para>fungicide. The seeds submerged in </para>
      <para>both times with 1000 ppm of the </para>
      <para>extract of L. palmeri, presented similar </para>
      <para>statistical values to the treatment </para>
      <para>with Captan. In treatments with ADE </para>
      <para>(sterile distilled water) and ethanol, </para>
      <para>the incidence of F. solani was higher </para>
      <para>than 82 %. No damaged seeds were </para>
      <para>observed in the control treatment.</para>
      <para>Regarding to the germination of the </para>
      <para>seeds, the control treatment presented </para>
      <para>more than 94%. The germination of </para>
      <para>Figura 3. Efecto del extracto etanólico de L. palmeri sobre la protección de semillas de garbanzo. </para>
      <para>A) Incidencia de F. solani. B) Porcentaje de semillas germinadas. Fungicida = Captan </para>
      <para>(0,2 mg.mL</para>
      <para>-1</para>
      <para>). ADE = agua destilada estéril. Etanol = etanol al 96 % </para>
      <para>v</para>
      <para>/</para>
      <para>v</para>
      <para>. Control = sin </para>
      <para>topatógeno. Columnas con letras diferentes indican diferencias signicativas de acuerdo a la </para>
      <para>prueba de Tukey (p&lt;0,05).</para>
      <para>Figure 3. Effect of the ethanolic extract of L. palmeri on the protection of chickpea seeds. A) Incidence of F. solani. B) </para>
      <para>Percentage of sprouted seeds. Synthetic fungicide = Captan (0.2 mg.mL</para>
      <para>-1</para>
      <para>). ADE = sterile distilled water. </para>
      <para>Ethanol = 96 % ethanol </para>
      <para>v</para>
      <para>/</para>
      <para>v</para>
      <para>. Control = without phytopathogen. Columns with different letters indicate </para>
      <para>signicant differences according to the Tukey test (p&lt;0.05).</para>
    </sect2>
    <sect2 id="pfe">
      <para>381</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2020, 37: 368-386. Octubre-Diciembre. </para>
      <para>Romero-Bastidas et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>La aplicación de 2000 ppm del </para>
      <para>extracto etanólico de L. palmeri </para>
      <para>por cinco y 10 min en las semillas, </para>
      <para>redujeron signicativamente </para>
      <para>en menos del 26 % la incidencia </para>
      <para>del topatógeno, superando al </para>
      <para>tratamiento con el fungicida </para>
      <para>sintético Captan. Las semillas </para>
      <para>embebidas en ambos tiempos con </para>
      <para>1000 ppm del extracto de L. palmeri, </para>
      <para>presentaron valores estadísticos </para>
      <para>similares al tratamiento con </para>
      <para>Captan. En los tratamientos con </para>
      <para>ADE (agua destilada estéril) y </para>
      <para>etanol, la incidencia de F. solani fue </para>
      <para>superior de 82 %. No se observaron </para>
      <para>semillas dañadas en el tratamiento </para>
      <para>control. </para>
      <para>En relación a la germinación </para>
      <para>de las semillas, el tratamiento </para>
      <para>control presentó más del 94 %. </para>
      <para>La germinación de las semillas </para>
      <para>embebidas en 2000 ppm del extracto </para>
      <para>etanólico de L. palmeri por cinco y </para>
      <para>10 min, presentaron valores del </para>
      <para>70 y 80 %, respectivamente. Las </para>
      <para>semillas con 1000 ppm del extracto </para>
      <para>etanólico de L. palmeri, presentaron </para>
      <para>valores estadísticos de germinación </para>
      <para>similares al tratamiento con Captan. </para>
      <para>En los tratamientos con ADE </para>
      <para>(agua destilada estéril) y etanol, la </para>
      <para>germinación fue menor del 18 %. </para>
      <para>Con respecto a la germinación y la </para>
      <para>pudrición de las semillas de garbanzo </para>
      <para>causada por F. oxysporum </para>
      <para>solo la dosis más alta del extracto </para>
      <para>etanólico de L. palmeri, disminuyó </para>
      <para>signicativamente la incidencia </para>
      <para>del hongo cuando las semillas de </para>
      <para>garbanzo fueron embebidas por 10 </para>
      <para>min y la germinación fue del 25 % </para>
      <para>(gura 4). </para>
      <para>the seeds submerged in 2000 ppm </para>
      <para>of L. palmeri ethanolic extract for </para>
      <para>ve and 10 min, presented values of </para>
      <para>70 and 80 %, respectively. The seeds </para>
      <para>with 1000 ppm of L. palmeri ethanolic </para>
      <para>extract, presented statistical values of </para>
      <para>germination similar to the treatment </para>
      <para>with Captan. In the treatments with </para>
      <para>ADE (sterile distilled water) and </para>
      <para>ethanol, the germination was less </para>
      <para>than 18 %.</para>
      <para>According to the germination </para>
      <para>and rot of chickpea seeds caused </para>
      <para>by F. oxysporum, only the </para>
      <para>highest dose of L. palmeri ethanolic </para>
      <para>extract signicantly decreased the </para>
      <para>incidence of the fungus when chickpea </para>
      <para>seeds were submerged for 10 min and </para>
      <para>germination was of 25 % (gure 4).</para>
      <para>The incidence of treatment only </para>
      <para>with F. oxysporum was higher than </para>
      <para>80 % in the rest of the treatments, </para>
      <para>reducing seed germination by less </para>
      <para>than 6 %. In the treatments with ADE </para>
      <para>(sterile distilled water) and ethanol, </para>
      <para>no incidence of F. oxysporum was </para>
      <para>observed and the germination of the </para>
      <para>seeds was 95 %.</para>
      <para>The chickpea seeds submerged </para>
      <para>in L. palmeri ethanolic extract were </para>
      <para>protected towards F. solani, in </para>
      <para>addition to maintain a high level of </para>
      <para>germination, overcoming the effect </para>
      <para>of the Captan synthetic fungicide, </para>
      <para>due to plant extracts are an option </para>
      <para>to maintain the vigor and health of </para>
      <para>seeds, essential characteristics for the </para>
      <para>yield and quality of the crops (Sayuri </para>
      <para>et al. 2018).</para>
      <para>The L. palmeri ethanolic extract </para>
      <para>did not signicantly decrease the </para>
      <para>incidence of F. oxysporum, therefore </para>
      <para>a low germination of chickpea </para>
    </sect2>
    <sect2 id="pff">
      <para>
        <inlinegraphic fileref="embedded:Image5" width="4.2846inch" depth="4.4862inch"/>
      </para>
      <para>382</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2020, 37: 368-386. Octubre-Diciembre.</para>
      <para>Romero-Bastidas et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>La incidencia del tratamiento solo </para>
      <para>con F. oxysporum fue superior al 80 </para>
      <para>% en el resto de los tratamientos, </para>
      <para>disminuyendo la germinación de </para>
      <para>las semillas en menos del 6 %. En </para>
      <para>los tratamientos con ADE (agua </para>
      <para>seeds was quantied, however, the </para>
      <para>highest dose and the longest time of </para>
      <para>exposure of the seed to the extract </para>
      <para>decreased the presence of the </para>
      <para>phytopathogen so, it is necessary to </para>
      <para>evaluate in future works a longer </para>
      <para>Figura 4. Efecto del extracto etanólico de L. palmeri sobre la protección de semillas de garbanzo. </para>
      <para>A) Incidencia de F. oxysporum. B) Porcentaje de semillas germinadas. Fungicida = </para>
      <para>Captan (0,2 mg.mL</para>
      <para>-1</para>
      <para>). ADE = agua destilada estéril. Etanol = etanol al 96 % </para>
      <para>v</para>
      <para>/</para>
      <para>v</para>
      <para>. Control </para>
      <para>= Sin .topatógeno. Columnas con letras diferentes indican diferencias signi.cativas </para>
      <para>de acuerdo a la prueba de Tukey (p&lt; 0,05). </para>
      <para>Figure 4. Effect of the ethanolic extract of L. palmeri on the protection of chickpea seeds. A) </para>
      <para>Incidence of F. oxysporum. B) Percentage of sprouted seeds. Synthetic fungicide </para>
      <para>= Captan (0.2 mg.mL</para>
      <para>-1</para>
      <para>). ADE = sterile distilled water. Ethanol = 96 % ethanol </para>
      <para>v</para>
      <para>/</para>
      <para>v</para>
      <para>. </para>
      <para>Control = without phytopathogen. Columns with different letters indicate signi.cant </para>
      <para>differences according to the Tukey test (p&lt; 0,05).</para>
    </sect2>
    <sect2 id="pf10">
      <para>
        <inlinegraphic fileref="embedded:Image6" width="2.3264inch" depth="0.0417inch"/>
      </para>
      <para>383</para>
      <para>Esta publicación cientíca en formato digital es continuación de la Revista Impresa: Depósito legal pp 196802ZU42, ISSN 0378-7818.</para>
      <para>Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2020, 37: 368-386. Octubre-Diciembre. </para>
      <para>Romero-Bastidas et al. ISSN 2477-9407</para>
      <para>End of English Version</para>
      <para>exposure time of the seed in higher </para>
      <para>doses of the L. palmeri ethanolic </para>
      <para>extract to achieve the control of </para>
      <para>this phytopathogen. In this regard, </para>
      <para>Onaran and Yanar (2016) and </para>
      <para>Iqbal et al. (2019), mention the </para>
      <para>importance of determining the plant </para>
      <para>inhibition dose in plant extracts to </para>
      <para>subsequently apply a dose that </para>
      <para>guarantees a better efciency for its </para>
      <para>control.</para>
      <para>The low efciency of the </para>
      <para>synthetic fungicide for the control </para>
      <para>of F. oxysporum in chickpea seeds is </para>
      <para>probably due to the resistance to the </para>
      <para>chemical groups of the fungicide, the </para>
      <para>virulence of the phytopathogen, host </para>
      <para>susceptibility, abiotic conditions, </para>
      <para>among others (Mengist et al., 2018).</para>
      <para>Conclusions</para>
      <para>The L. palmeri ethanolic extract </para>
      <para>reduced the radial growth of F. solani </para>
      <para>and F. oxysporum in vitro, and its </para>
      <para>application in chickpea seeds reduced </para>
      <para>the incidence of both phytopathogens. </para>
      <para>Plant extracts can be an efcient </para>
      <para>option in the management of </para>
      <para>phytopathogenic fungus associated </para>
      <para>with seeds, being an ecological and </para>
      <para>low cost solution.</para>
      <para>destilada estéril) y etanol, no se </para>
      <para>observó incidencia de F. oxysporum y </para>
      <para>la germinación de las semillas fue del </para>
      <para>95 %.</para>
      <para>Las semillas de garbanzo </para>
      <para>embebidas en el extracto etanólico de </para>
      <para>L. palmeri fueron protegidas hacia F. </para>
      <para>solani, además de mantener un alto </para>
      <para>nivel de germinación superando al </para>
      <para>efecto del fungicida sintético Captan, </para>
      <para>por lo que los </para>
      <para>extractos de plantas son </para>
      <para>una opción para mantener el vigor y </para>
      <para>sanidad de las semillas, características </para>
      <para>indispensables para el rendimiento y </para>
      <para>calidad de los cultivos (Sayuri et al. </para>
      <para>2018). </para>
      <para>El extracto etanólico de L. palmeri </para>
      <para>no disminuyó signicativamente la </para>
      <para>incidencia de F. oxysporum por lo tanto </para>
      <para>se cuanticó una baja germinación </para>
      <para>de las semillas de garbanzo, sin </para>
      <para>embargo, la dosis más alta y el mayor </para>
      <para>tiempo de exposición de la semilla al </para>
      <para>extracto disminuyó la presencia del </para>
      <para>topatógeno, por lo que es necesario </para>
      <para>evaluar en futuros trabajos un mayor </para>
      <para>tiempo de exposición de la semilla en </para>
      <para>dosis más altas del extracto etanólico </para>
      <para>de L. palmeri para lograr el control </para>
      <para>de este topatógeno. Al respecto </para>
      <para>Onaran y Yanar (2016) y Iqbal et al. </para>
      <para>(2019), mencionan la importancia de </para>
      <para>determinar en los extractos vegetales </para>
      <para>la dosis de inhibición por topatógeno </para>
      <para>para posteriormente aplicar una dosis </para>
      <para>que garantice una mejor eciencia </para>
      <para>para su control.</para>
      <para>La baja eciencia del fungicida </para>
      <para>sintético para el control de F. </para>
      <para>oxysporum en las semillas de </para>
      <para>garbanzo probablemente se deba </para>
      <para>a la resistencia hacia los grupos </para>
      <para>químicos del fungicida, la virulencia </para>
      <para>del topatógeno, susceptibilidad del </para>
      <para>hospedero, condiciones abióticas, entre </para>
      <para>otros (Mengist et al., 2018).</para>
      <para>Conclusiones</para>
      <para>El extracto etanolicó de L. palmeri </para>
      <para>disminuyó in vitro el crecimiento </para>
      <para>radial de F. solani y F. oxysporum y </para>
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      <para>su aplicación en semillas de garbanzo </para>
      <para>redujo la incidencia de ambos </para>
      <para>topatógenos. Los extractos de plantas </para>
      <para>pueden ser una opción eciente en </para>
      <para>el manejo de hongos topatógenos </para>
      <para>asociados a semillas, siendo una </para>
      <para>solución ecológica y de bajo costo. </para>
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